Шпилька М20 ДСТУ 22042 ДСТУ 22043 для деталей з гладкими отворами — купити за найкращою ціною в Україні від Схід-Інтер™
Опис
Характеристики
Специфікації
Інформація для замовлення
Опис шпилька М20 ДСТУ 22042, 22043 для деталей з гладкими отворами
Шпилька різьбова ДСТУ 22042, 22043 (гост 22042, 22043) номінальний діаметр різьби 20 мм — різьбовий стрижень класу точності B (ДСТУ 22042-76) і A (ДСТУ 22043-76) з двома однаковими по довжині різьбовими кінцями або з різьбою по всій довжині. Шпилька ДСТУ 22042, ДСТУ 22043 призначена для гладких отворів в деталях і виробляється з вуглецевої, легованої, нержавіючої, жароміцної сталі марок 10, 20, 35, 45, 35Х, 40Х, 30ХГСА, 40ХНМА, 08Х18Н10, 08Х18Н10Т, 10Х17Н13М2, 12Х18Н10Т, 20Х13, 25Х1МФ, 25Х2М1Ф, 30ХМА або їх аналогів і постачається в класі міцності 5.8, 8.8, 10.9*. Для корозійного захисту на сталеву чорну шпильку може бути нанесене цинкове покриття, в той час як шпилька з нержавіючої і жароміцної стали успішно протистоїть впливу агресивних середовищ.
* Для шпильок з вуглецевої або легованої сталі.
Можливо вас також зацікавить виробництво шпильок з різних марок сталі і сплавів.
Шановні клієнти! Ціни вказані з ПДВ. Будь ласка, зверніть увагу на попередні умови та мінімальну суму замовлення шпильки М20 ДСТУ 22042, 22043 [детальніше]
Вага та розміри шпилька М20 ДСТУ 22042, 22043 для деталей з гладкими отворами
Нижче наведені основні характеристики, розміри та вага шпильки М20 ДСТУ 22042, 22043 для гладких отворів.
Ви можете подивитися опис і розміри шпильок ДСТУ 22042, 22043, а також схожих стандартів DIN 975 та DIN 976 в повному тексті цих стандартів у форматі pdf в розділі Специфікації або у Довіднику стандартів ДСТУ DIN..
Розміри
| ДСТУ 22042, ДСТУ 22043 | |
| номінальний діаметр різьби, d | 20 |
| крок різьби, P | 2,5 – великий 1,5 – малий |
| діаметр стрижня, d1 | 20 |
| діаметр стрижня, d2 | ≈ 20 |
| довжина, l | 80 – 500 |
| клас міцності | 5. 8, 8.8 |
Вага
Не знаєте як визначити довжину шпильок ДСТУ 22042, ДСТУ 22043 для гладких отворів?
| M20 | ДСТУ 22042, ДСТУ 22043 | ||
| Довжина шпильки, l [1] | Довжина різьби, b [2] | Вага 1 шт, кг [3] | |
| Виконання 1 | Виконання 2 | ||
| 80 | * | 0,1666 | 0,1665 |
| 85 | * | 0,1770 | 0,1769 |
| 90 | * | 0,1874 | 0,1873 |
| 95 | * | 0,1978 | 0,1977 |
| 100 | * | 0,2082 | 0,2081 |
| 105 | * | 0,2186 | 0,2185 |
| 110 | 46 | 0,2359 | 0,2289 |
| 115 | 46 | 0,2482 | 0,2393 |
| 120 | 46 | 0,2606 | 0,2497 |
| 130 | 52 | 0,2852 | 0,2705 |
| 140 | 52 | 0,3099 | 0,2913 |
| 150 | 52 | 0,3346 | 0,3121 |
| 160 | 52 | 0,3546 | 0,3329 |
| 170 | 52 | 0,3793 | 0,3537 |
| 180 | 52 | 0,4039 | 0,3746 |
| 190 | 52 | 0,4286 | 0,3954 |
| 200 | 52 | 0,4533 | 0,4162 |
| 220 | 65 | 0,5026 | 0,4578 |
| 240 | 65 | 0,5519 | 0,4994 |
| 260 | 65 | 0,6012 | 0,5410 |
| 280 | 65 | 0,6506 | 0,5826 |
| 300 | 65 | 0,6999 | 0,6243 |
| 320 | 65 | 0,7493 | 0,6659 |
| 340 | 65 | 0,7985 | 0,7075 |
| 360 | 65 | 0,8478 | 0,7491 |
| 380 | 65 | 0,8972 | 0,7907 |
| 400 | 65 | 0,9465 | 0,8323 |
| 420 | 65 | 0,9958 | 0,8740 |
| 450 | 65 | 1,0700 | 0,9364 |
| 480 | 65 | 1,1440 | 0,9988 |
| 500 | 65 | 1,1930 | 1,0404 |
Всі розміри вказані в міліметрах.
1. ↑ Увага: Не всі довжини, зазначені в таблиці, можливі до постачання, уточнюйте у менеджерів.
2. ↑ Знаком * відмічені шпильки з повною різьбою. За запитом споживача для всіх шпільок може бути виконана різьба по всій довжині.
3. ↑ Значення ваги шпильок ДСТУ 22042-76, ДСТУ 22043-76 є довідковими.
Як купити шпилька М20 ДСТУ 22042, 22043 для деталей з гладкими отворами
Увага. Цей товар поставляється з характеристиками: ДСТУ 22042-76, виконання 2, клас міцності 5.8, великий крок різьби, без покриття; доступні до замовлення шпильки ДСТУ 22042 виконання 1, шпильки ДСТУ 22043 (виконання 1 і 2), шпильки клас міцності 8.8 і 10.9, шпильки з малим кроком різьби, шпильки з цинковим хроматованим покриттям, а також шпильки з нержавіючої та жароміцної сталі (тільки для діаметрів від М24, марки сталі, доступні для замовлення, уточнюйте менеджера). Будь ласка, уточнюйте у вашого менеджера ціни і можливість поставки шпильки М20 ДСТУ 22042, 22043, в тому числі з іншими характеристиками.
Мінімальне замовлення для однієї позиції цього товару вказано в ціновому блоці цієї сторінки, при загальній мінімальній сумі замовлення від 600 грн., а за відсутності позиції на складі — кратно паковання (тип паковання дивіться на вкладці Характеристики або уточніть у вашого менеджера). Ціна на шпильки ДСТУ 22042, ДСТУ 22043 вказана «від», тому перед онлайн-оплатою рекомендуємо уточнити у менеджера необхідну вам довжину шпильки, клас міцності, виконання різьби, марку сталі, вимоги до захисного покриття, а також наявність і ціну виходячи з вашої потреби. ↑
Підтримка. Ви можете отримати додаткову інформацію про товар, умови його придбання, а також про роботу компанії на сторінках Найпоширеніші питання, Контакти або замовити послугу Передзвоніть мені.
Гарантія. Цей товар відповідає заявленим стандартам ДСТУ, ДСТУ, DIN, ISO. На вимогу замовника, партія товару супроводжується сертифікатом або випискою з сертифіката якості, а для деяких видів кріплення – результатами випробувань та/або сертифікатом якості на матеріал.
Доставка здійснюється по всій території України (Київ, Харків, Черкаси, Донецьк, Суми, Львів, Луцьк, Рівне, Одеса, Вінниця, Ужгород, Чернігів, Житомир, Хмельницький, Херсон, Луганськ, Дніпро, Кропивницький, Івано-Франківськ, Тернопіль, Миколаїв, Чернівці, Запоріжжя, Полтава та інші міста) службами автоперевезень Делівері, Нова Пошта, САТ і власним автотранспортом компанії Схід-Інтер.
Рекомендоване кріплення для шпильки М20 ДСТУ 22042, 22043 для деталей з гладкими отворами
| Гайка М20 DIN 315 GF 5.0 | |
| Гайка М20 DIN 315 GF нерж | |
| Гайка М20 DIN 439 04, 05 | |
| Гайка М20 DIN 439 нерж | |
| Гайка М20 DIN 934 5.0 | |
| Гайка М20 DIN 934 5.0 без покриття — 15 шт/пак | |
| Гайка М20 DIN 934 5.0 цинк — 15 шт/пак | |
| Гайка М20 DIN 934 8.0 | |
| Гайка М20 DIN 934 10.0 | |
| Гайка М20 DIN 934 нерж | |
| Гайка М20 DIN 936 04, 05 | |
Гайка М20 DIN 982 8. 0, 10.0 | |
| Гайка М20 DIN 982 нерж | |
| Гайка М20 DIN 985 8.0, 10.0 | |
| Гайка М20 DIN 985 нерж | |
| Гайка М20 DIN 6923 8.0, 10.0 | |
| Гайка М20 DIN 6923 нерж | |
| Гайка М20 ДСТУ 5915 5.0, 6.0 | |
| Гайка М20 ДСТУ 5915 8.0, 10.0 | |
| Гайка М20 ДСТУ 5916 04, 05 | |
| Гайка М20 ДСТУ 5918 5.0, 6.0 | |
| Гайка М20 ДСТУ 5918 5.0, 6.0 | |
| Шайба М20 DIN 93 сталь | |
| Шайба М20 DIN 93 нерж | |
| Шайба М20 DIN 125 140HV | |
| Шайба М20 DIN 125 без покриття — 15 шт/пак | |
| Шайба М20 DIN 125 цинк — 15 шт/пак | |
| Шайба М20 DIN 125 300HV | |
| Шайба М20 DIN 125 нерж | |
| Шайба М20 DIN 127 сталь | |
| Шайба М20 DIN 127 без покриття — 15 шт/пак | |
| Шайба М20 DIN 127 цинк — 15 шт/пак | |
| Шайба М20 DIN 127 нерж | |
| Шайба М20 DIN 432 сталь | |
| Шайба М20 DIN 432 нерж | |
| Шайба М20 DIN 434 сталь | |
| Шайба М20 DIN 434 нерж | |
| Шайба М20 DIN 435 сталь | |
| Шайба М20 DIN 435 нерж< |
- GOST 22043 76.
pdf - GOST 22042 76.pdf
pdfШпилька резьбовая с ввинчиваемым концом ГОСТ 22038-76: технические характеристики
Аналоги ГОСТ: ГОСТ 22039-76.
Аналоги (ISO, DIN, EN ISO):
|
Стандарт |
Наименование |
Примечание |
DIN 835 |
Шпилька резьбовая с ввинчиваемым концом (2d) |
Отсутствуют существенные различия с ГОСТ 22038-76 (исполнение 1). |
ГОСТ 22038-76:
|
Параметры шпильки |
Номинальный диаметр резьбы d |
||||||||||||||||||||
|
М2 |
М2,5 |
М3 |
М4 |
М5 |
М6 |
М8 |
М10 |
М12 |
М14 |
М16 |
М18 |
М20 |
М22 |
М24 |
М27 |
М30 |
М36 |
М42 |
М48 |
||
|
Шаг резьбы, P |
крупный |
0,4 |
0,45 |
0,5 |
0,7 |
0,8 |
1 |
1,25 |
1,5 |
1,75 |
2 |
2 |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
3 |
3 |
3,5 |
4 |
4,5 |
5 |
|
мелкий |
— |
— |
— |
— |
— |
— |
1 |
1,25 |
1,5 |
1,5 |
1,5 |
1,5 |
1,5 |
1,5 |
2 |
2 |
2 |
3 |
3 |
3 | |
|
Длина ввинчиваемого резьбового конца, b1 |
4 |
5 |
6 |
8 |
10 |
12 |
16 |
20 |
24 |
28 |
32 |
36 |
40 |
44 |
48 |
54 |
60 |
72 |
84 |
95 |
|
|
|
L ≤ 125 |
10 |
11 |
12 |
14 |
16 |
18 |
22 |
26 |
30 |
34 |
38 |
42 |
46 |
50 |
54 |
60 |
66 |
78 |
90 |
— |
|
|
|
|
18 |
20 |
22 |
24 |
28 |
32 |
36 |
40 |
44 |
48 |
52 |
56 |
60 |
66 |
72 |
84 |
96 |
108 |
|
|
L > 200 |
|
|
|
— |
— |
— |
— |
— |
49 |
53 |
57 |
61 |
65 |
69 |
73 |
79 |
85 |
97 |
109 |
121 |
|
|
Длина шпильки, l |
Мин. |
12 |
14 |
16 |
18 |
20 |
25 |
28 |
35 |
38 |
45 |
48 |
55 |
60 |
65 |
70 |
75 |
85 |
95 |
110 |
130 |
|
Макс. |
80 |
160 |
160 |
160 |
160 |
160 |
200 |
200 |
220 |
220 |
220 |
220 |
240 |
240 |
240 |
260 |
260 |
300 |
300 |
300 |
|
* Обращаем внимание, что длина резьбовой части шпильки (b2) отличается от указанных в таблице при производстве шпильки с длиной (l) меньше указанной в настоящей таблице.
Все параметры в таблице указаны в мм.
ООО Нью Логистик Г Ташкент Г Ташкент Чиланзарский Р Н Ал Чорбог Д 82 А импортер в Узбекистан
ООО Нью Логистик Г Ташкент Г Ташкент Чиланзарский Р Н Аль Чорбог Д 82 А импортер в Узбекистан | Данные о коносаменте ООО «Нью Логистик» Г Ташкент Г Ташкент Чиланзарский Р Н Аль Чорбог Д 82 АРасписание A Демонстрация
Импортер Узбекистан
Запрос на удаление этой страницыОбразец коносамента
| Дата | 24 марта 2017 |
| Имя импортера | ООО «НЬЮ ЛОГИСТИК» г.Ташкент г.Ташкент, Чиланзарский р-н ал Чорбог Д, 82-А |
| Код ТН ВЭД | 8431430000 |
| Описание продукта | 1 шпилька с контргайкой для воронки смешавашая м18, л-14 — 288комплект, вес: 149 кг 2 3 места, 3 шаблона шт коробка/деталь3 hjcu4298874 собственность грузовладельца 1 шпилька с контргайкой для воронки смешавашая м14, л-12 — 128комплект , вес: 33 кг 2 шт.  |
| Страна происхождения | КИТАЙ |
| Количество | 570 |
| Единица измерения | кг |
| CIF долларов США | 4160.872081 |
| Брелок долларов США | 4.161 |
| Особенности перемещения декларируемых товаров | Не установлено |
| Вид транспорта на границе | ЖЕЛЕЗНОДОРОЖНЫЙ ТРАНСПОРТ |
| Дополнительное описание | Шпилька с контргайкой для воронки смешавашая М20, Л-16 — 24комплект |
| Тип декларации | Импорт |
| Код импортера | 25066939 |
| Вес нетто | 570 |
| Код декларации | ИМ |
| Предыдущий таможенный режим, если таковой существовал | Не установлено |
| Заявленный таможенный режим | Таможенный склад |
Реквизиты ООО «НЬЮ ЛОГИСТИК» г.
.jpg)
Ташкент г.Ташкент, Чиланзарский р-н ал Чорбог Д, 82-А| Дата | Код ТН ВЭД | Описание продукта | Количество | Значение | Импортер | Экспортер | Зарубежная страна | [13] Дополнительные поля (щелкните для просмотра) |
|---|
Откуда ООО «НЬЮ ЛОГИСТИК» г.Ташкент г.Ташкент, Чиланзарский р-н ал Чорбог Д, 82-А импорт откуда?
Название раздела 1
Страна 1Название раздела 2
Страна 2Название раздела 3
Страна 3Название раздела 4
Страна 4Название раздела 5
Страна 5Получайте данные о мировой торговле онлайн всегда под рукой
Компания
- О нас
- Как мы помогаем
- Товары и услуги
- Доступность данных
- Почему выбирают нас
- План и цены
- Карьера Мы набираем!
- Наши клиенты
- Блог
- Часто задаваемые вопросы
- Свяжитесь с нами
НАШИ ДАННЫЕ
- Доступность данных
- охваченных стран
- Поиск оперативных данных
- Загрузка образцов данных
- Торговые данные Азии
- Торговые данные Южной Америки
- Торговые данные Северной Америки
- Торговые данные Африки
- Торговые данные Европы
- Торговые данные Океании
Дополнительные ресурсы
- Партнерская программа
- Общие данные о продукте Wise
- Поиск импортеров по всему миру
- Поиск экспортеров по всему миру
- Тенденции поискового рынка
- Список компаний
- Новости мировой торговли
- Уведомление
- Торговые инструменты
- Найдите код ТН ВЭД
Следите за нами на
ПОЛОЖЕНИЯ И УСЛОВИЯ / ПОЛИТИКА КОНФИДЕНЦИАЛЬНОСТИ
Copyright © 2021 Export Genius.
Все права защищены
Смотрите данные и идеи в действие.
Полногеномная идентификация и характеристика партенокарпических гомологов генов, связанных с завязью плодов, у огурца (Cucumis sativus L.)
1. Реннер С.С., Шефер Х. Филогенез и эволюция тыквенных. В: Грумет Р., Кацир Н., Гарсия-Мас Дж., редакторы. Генетика и геномика тыквенных. Международное издательство Спрингер; 2017. С. 13–23. [Google Scholar]
2. Хомицки Г., Шефер Х., Реннер С.С. Происхождение и одомашнивание культур Cucurbitaceae: выводы из пилогении, геномики и археологии. Новый Фитол. 2020;226:1240–1255. doi: 10.1111/nph.16015. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
3. Martinez C, Manzano S, Megías Z. Участие биосинтеза этилена и передачи сигналов в завязывании плодов и раннем развитии плодов тыквы цуккини ( Cucurbita pepo L.) BMC Plant Biol. 2013;13(1):139. дои: 10.
1186/1471-2229-13-139. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Gustafson FG. Распределение ауксина в плодах и его значение в развитии плодов. Являюсь. Дж. Бот. 1939; 26: 189–194. [Google Scholar]
5. Фабрис Р.Б., Мишель Д., Патрик Г. Чем меньше, тем лучше: новые подходы к выращиванию бессемянных фруктов. Биотопика. 2000; 18: 233–242. [PubMed] [Академия Google]
6. Picarella ME, Mazzucato A. Возникновение бессемянности у высших растений; представления о роли и механизмах партенокарпии. Передний. Растениевод. 2019 г.: 10.3389/fpls.2018.01997. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
7. Schwabe WW, Mills JJ. (1981) Гормоны и партенокарпический набор плодов: обзор литературы. Хорт. Тезисы. 1981; 51: 661–698. [Google Scholar]
8. Su L, et al. Цитокинин и ауксин модулируют развитие партенокарпии огурца. науч. Хорт. 2021;282:110026. doi: 10.1016/j.scienta.2021.110026. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
9.
Ren Z, Li Z, Miao Q, Yang Y, Deng W, Hao Y. Гомолог ауксинового рецептора в Solanum lycopersicum стимулирует завязывание плодов томатов и морфогенез листьев. Дж. Эксп. Бот. 2011;62:2815–2826. [PubMed] [Google Scholar]
10. Джолдерсма Д., Лю З. Создание девственных плодов: молекулярная и генетическая основа партенокарпии. Дж. Эксп. Бот. 2018;69(5):955–962. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
11. García-Hurtado N, et al. Характеристика трансгенных томатов со сверхэкспрессией гиббереллин-20-оксидаза обнаруживает индукцию роста партенокарпических плодов, более высокую урожайность и изменение пути биосинтеза гиббереллина. Дж. Эксп. Бот. 2012;63:5803–5813. [PubMed] [Google Scholar]
12. Hayata Y, Niimi Y. Синтетический цитокинин-1-(2=хлор=4=пиридил)-3-фенилмочевина (CPPU)-способствует завязыванию плодов и вызывает партенокарпию у арбуза. Варенье. Хорт. соц. 1995; 120:997–1000. [Google Scholar]
13. Льюис Д.Х., Бердж Г.К., Хоппинг М.
Е., Джеймсон П.Е. Цитокинины и развитие плодов киви ( Actinidia deliciosa ). II. Эффекты пониженного опыления и применения CPPU. Физиол. Растение. 1996; 98: 187–95. [Google Scholar]
14. Кадота М., Ниими Ю. Влияние типов цитокининов и их концентрации на пролиферацию побегов и гипергидратацию побегов сорта груши in vitro. Органная культура растительных клеток. 2003; 72: 261–265. [Google Scholar]
15. Pascual L, et al. Транскриптомный анализ развития плодолистика томата выявил изменения в синтезе этилена и гиббереллина во время завязывания партенокарпических плодов pat3/pat4. BMC Растение Биол. 2009 г.;9(1):67. дои: 10.1186/1471-2229-9-67. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Ротино Г.Л., Перри Э., Зоттини М., Соммер Х., Спена А. Генная инженерия партенокарпических растений. Нац. Биотехнолог. 1997; 15: 1398–1401. [PubMed] [Google Scholar]
17. Yin Z, Malinowski R, Ziolkowska A, Sommer H, Plader W, Malepszy S. Конструкция, содержащая DefH9-iaaM, эффективно индуцирует партенокарпию у огурца.
Клетка. Мол. биол. лат. 2006; 11: 279–290. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
18. Гетц М., Хупер Л.С., Джонсон С.Д., Родригес Дж.К., Вивиан-Смит А., Колтунов А.М. Экспрессия аберрантных форм AUXIN RESPONSE FACTOR8 стимулирует партенокарпию у арабидопсиса и томата. Завод Физиол. 2007;145(2):351–366. doi: 10.1104/стр.107.104174. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. de Jong M, Wolters-Arts M, Feron R, Mariani C, Vriezen WH. Фактор ответа на ауксин 7 (SlARF7) Solanum lycopersicum регулирует передачу сигналов ауксина во время завязывания и развития плодов томатов. Завод Дж. 2009 г.;57:160–170. [PubMed] [Google Scholar]
20. Чаудхури А.М., Мин Л., Миллер С., Крейг С., Деннис Э.С., Пикок В.Дж. Независимое от оплодотворения развитие семян у Arabidopsis thaliana . проц. Нац. акад. науч. 1997; 94:4223–4228. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
21. Kohler C, Hennig L, Spillane C, Pien S, Gruissem W, Grossniklaus U.
Белок группы Polycomb MEDEA регулирует развитие семян, контролируя экспрессию MADS- ген коробки PHERES1 . Гены Дев. 2003; 17:1540–1553. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
22. Охад Н., Маргоссян Л., Хсу Ю.С., Уильямс С., Репетти П., Фишер Р.Л. Мутация, обеспечивающая развитие эндосперма без оплодотворения. проц. Нац. акад. науч. 1996; 93: 5319–5324. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
23. Li J, et al. Протеомные исследования завязи плодов огурца ( Cucumis sativus L.) предполагают признаки гормононезависимой партенокарпии. Геномика BMC. 2017;18:896. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
24. Wu Z, et al. Идентификация стабильного QTL основного эффекта (Parth 2.1), контролирующего партенокарпию у огурца, и связанный с ним анализ генов-кандидатов посредством секвенирования всего генома. BMC Растение Биол. 2016;16:182. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
25. Gou CX, et al. Оценка и генетический анализ партенокарпической гермоплазмы огурца.
Гены. 2022;13:225. doi: 10.3390/genes1302022. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Lietzow CD, Zhu HY, Pandey S, Havey MJ, Weng Y. Картирование QTL партенокарпических плодов при переработке огурца в Северной Америке. Теор. Приложение. Жене. 2016;129:2387–2401. [PubMed] [Google Scholar]
27. Shinozaki Y, et al. Идентификация и функциональное исследование мягкого аллеля Ген SlDELLA , обеспечивающий потенциал для повышения урожайности томатов. науч. Отчет 2018; 8:12043. doi: 10.1038/s41598-018-30502-w. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Takisawa R, et al. Партенокарпический ген Pat-k возникает в результате естественной мутации SIAGL6, влияющей на развитие плодов томата ( Solanum lycopersicum L.) BMC Plant Biol. 2018;18:72. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
29. Klap C, et al. Факультативная партенокарпия томатов возникает в результате потери функции SlAGAMUS-LIKE 6.
Биотехнология растений. Дж. 2017; 15:634–647. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
30. He M, et al. SITPL1 молчание вызывает факультативную партенокарпию у томата. Передний. Растениевод. 2021;12:672232. doi: 10.3389/fpls.2021.672232. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Fos M, Nuez F, García-Martínez JL. Ген pat-2, , индуцирующий естественную партенокарпию, изменяет содержание гиббереллинов в завязях неопыленных томатов. Завод Физиол. 2000;122(2):471–480. doi: 10.1104/стр.122.2.471. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Mesejo C, Reig C, Martínez-Fuentes A, Agustí M. Производство партенокарпических плодов мушмулы ( Eriobotrya japonica Lindl.) с использованием гибберелловой кислоты. науч. Хортик. 2010; 126:37–41. [Google Scholar]
33. Chai L, Chai P, Chen S, Flaishman MA, Ma H. Анализ транскриптома раскрывает пространственно-временную модуляцию экспрессии фитогормонов, лежащую в основе индуцированного гиббереллином партенокарпического завязывания плодов у инжира типа Сан-Педро ( Ficus carica L.
) BMC Plant Biol. 2018;18:100. doi: 10.1186/s12870-018-1318-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Sun TP, et al. Молекулярный механизм передачи сигналов гиббереллина у растений. Анну. Преподобный завод биол. 2004; 55: 197–223. [PubMed] [Google Scholar]
35. Chai P, Dong S, Chai L, Chen S, Flaishman M, Ma H. Цитокинин-индуцированный партенокарпий инжира типа Сан-Педро ( Ficus carica L.) основная культура: объясняется анализ фитогормонов и сравнение транскриптомных сетей. Завод Мол. биол. 2019;99:329–346. [PubMed] [Google Scholar]
36. Fernandez L, Chaib J, Martinez-Zapater JM, Thomas MR, Torregrosa L. Неправильное выражение 9Ген 0321 PISTILLATA-подобный MADS box препятствует развитию плодов виноградной лозы. Плант Дж. 2013; 73: 918–928. [PubMed] [Google Scholar]
37. Zhang H, et al. Ниже GA4 PbCYP78A6 участвует в регуляции генов, связанных с клеточным циклом, и в партеногенезе у груши ( Pyrus bretshneideri Retd.
) BMC Plant Biol. 2021;21:292. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
38. Sharif R, et al. Гормональные взаимодействия, лежащие в основе формирования партенокарпических плодов у садовых культур. Хорт. Рез. 2022 год: 10.1093/час/uhab024. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Schmidt A, et al. Белок группы polycomb MEDEA и ДНК-метилтрансфераза MET1 взаимодействуют, подавляя автономное развитие эндосперма у Arabidopsis. Плант Дж. 2013; 73: 776–787. [PubMed] [Google Scholar]
40. Wang H, et al. PbGA20ox2 регулирует завязывание плодов и вызывает партенокарпию за счет увеличения содержания GA4. Передний. Растениевод. 2020;11:113. doi: 10.3389/fpls.2020.00113. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. Molesini B, Dusi V, Pennisi F, Pandolfini F. Как гормоны и транскрипционные факторы MADS-box участвуют в контроле завязывания плодов и партенокарпии у томатов. Гены. 2020;11:1441. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
42.
Шарма Н., Рассел С.Д., Бхалла П.Л., Сингх М.Б. Предполагаемые цис-регуляторные элементы в генах, сильно экспрессирующихся в сперматозоидах риса. BMC Res. Примечания. 2011;4:319. дои: 10.1186/1756-0500-4-319. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Lee-Huang S, Lin JJ, Kung HF, Huang PL, Lee L, Huang PL. Ген, кодирующий эритропоэтин человека, содержит СААТ-боксы, ТАТА-боксы и другие регуляторные элементы транскрипции в своей 5′-фланкирующей области. Ген. 1993; 128: 227–236. doi: 10.1016/0378-1119(93)
-M. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]44. Кузнецов В., Ландсбергер М., Мейрер Дж., Эльмюллер Р. Сборка связывающего комплекса СААТ-бокс на промоторе гена фотосинтеза регулируется светом, цитокинином и стадией из пластид. Дж. Биол. хим. 1999;274:36009–36014. doi: 10.1074/jbc.274.50.36009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Menkens AE, Schindler U, Cashmore AR. G-box: вездесущий регуляторный элемент ДНК в растениях, связанный с семейством GBF белков bZIP.
Тенденции биохим. науч. 1995; 20: 506–510. doi: 10.1016/S0968-0004(00)89118-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
46. Гальперин М.Ю., Фришман Д. На пути к автоматическому предсказанию функции белка по микробным геномным последовательностям. В: Craig AG, Hoheisel JD, редакторы. Методы микробиологии. Академическая пресса; 1999. стр. 245–263. [Google Scholar]
47. Келли Л.А., Штернберг М.Э. Предсказание структуры белка в Интернете: тематическое исследование с использованием сервера Phyre. Нац. протокол 2009; 4: 363–371. [PubMed] [Google Scholar]
48. Seymour GB, et al. Ген SEPALLATA участвует в развитии и созревании плодов земляники ( Fragaria ×ananassa Duch.), неклимактерической ткани. Дж. Эксп. Бот. 2011;62:1179–88. doi: 10.1093/jxb/erq360. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Liu L, et al. Гистологически, гормонально и транскриптомно выявлены изменения при индуцированной гиббереллином партенокарпии в плодах груши.
Хорт. Рез. 2018;5:1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
50. Coen ES, Meyerowitz EM. Война мутовок: генетические взаимодействия, контролирующие развитие цветка. Природа. 1991; 353:31–37. [PubMed] [Google Scholar]
51. Мацуо С., Кикучи К., Фукуда М., Хонда И., Иманиши С. Роль и регуляция цитокининов в развитии плодов томатов. Дж. Эксп. Бот. 2012;63(15):5569–5579. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
52. Yu X, et al. Распространенные экзон-интронные структурные изменения в подсемействах APETALLA1/FRUITFULL, SEPALLATA, AGAMOUS-LIKE6 и FLOWERING LOCUS C MADS-box дают новое представление об их эволюции. Передний. Растениевод. 2016 г.: 10.3389/fpls.2016.00598. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Li Y, Luo W, Sun Y, Chang H, Ma K, Zhao Z, Lu L. Идентификация и анализ экспрессии miR160 и их генов-мишеней в огурец. Биохим. Жене. 2022; 60: 127–152. [PubMed] [Академия Google]
54. Фу Ф.К., Мао В.Х., Ши К.
, Чжоу Ю.Х., Асами Т., Ю.Дж.К. Роль брассиностероидов в раннем развитии плодов огурца. Дж. Эксп. Бот. 2008;59(90):2299–2308. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
55. Sun H, Pang B, Yan J, Wang T, Wang L, Chen C, Li Q, Ren Z. Всесторонний анализ генов семейства гиббереллиноксидаз огурца и функциональных характеристика развития корней CsGA20ox1 i n у Arabidopsis . Междунар. Дж. Мол. науч. 2018;19(10):3135. дои: 10.3390/ijms19103135. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Mejia N, et al. Молекулярные, генетические и транскрипционные доказательства роли VvAGL11 в стеноспермокарпической бессемянности виноградной лозы. BMC Растение Биол. 2011;11:5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
57. Kumar P, et al. Ключевая роль bZIP в биосинтезе амилозы по данным исследования генома и анализа транскриптома у мутантов пшеницы ( Triticum aestivum L.). науч. Отчет 2018; 8:17240. дои: 10.
1038/s41598-018-35366-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
58. Kumar P, Kumar P, Sharma D, Verma SK, Halterman D, Kumar A. Полногеномная идентификация и профилирование экспрессии основных факторов транскрипции лейциновой молнии после абиотических стрессов у картофеля ( Solanum tuberosum L.) PLoS One. 2021;16(3):e0247864. doi: 10.1371/journal.pone.0247864. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
59. Kumar P, et al. Понимание регуляторной связи факторов транскрипции абсцизовой кислоты и bZIP с биосинтезом амилозы в пшенице. Мол. биол. Отчет 2021; 48 (3): 2473–2483. doi: 10.1007/s11033-021-06282-4. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
60. Hartmann U, Sagasser M, Mehrtens F, Stracke R, Weisshaar B. Дифференциальные комбинаторные взаимодействия цис-действующих элементов, распознаваемые факторами R2R3-MYB, BZIP и BHLH, контролируют светочувствительную и тканеспецифическую активацию биосинтеза фенилпропаноидов.
гены. Завод Мол. биол. 2005; 57: 155–171. [PubMed] [Google Scholar]
61. Маниатис Т., Гудборн С., Фишер Дж.А. Регуляция индуцируемой и тканеспецифичной экспрессии генов. Наука. 1987; 236:1237–1245. [PubMed] [Академия Google]
62. Siberil Y, Doireau P, Gantet P. Plant bZIP G-box связывающие факторы, модульная структура и механизмы активации. Евро. Дж. Биохим. 2001;268(22):5655–5666. [PubMed] [Google Scholar]
63. Кригер Э.К., Аллен Э., Гилбертсон Л.А., Робертс Дж.К. Помидор Flavr Savr, ранний пример технологии РНК-интерференции. Хорт. науч. 2008;43:962–964. [Google Scholar]
64. Мартино Б. Первый плод: создание томата Flavr Savr и рождение биотехнологических продуктов. компании McGraw Hill; 2001. [Google Академия]
65. Унни С.К., Вивек П.Дж., Маджу Т.Т., Варгезе Р.Т., Сония Э.В. Молекулярное клонирование и характеристика специфичного для плодов промотора из Cucumis sativus L. Am. Дж. Мол. биол. 2012;2:132–139. [Google Scholar]
66.
Pla M, et al. Цис-регуляторный элемент CCACGTGG участвует в реакциях АБК и водного стресса гена кукурузы rab 28. Plant Mol. биол. 1993; 21: 259–266. [PubMed] [Google Scholar]
67. Whalley HJ, et al. Транскриптомный анализ показывает кальциевую регуляцию специфических промоторных мотивов у арабидопсиса. Растительная клетка. 2013;23:4079–4095. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
68. Каур А., Пати П.К., Пати А.М., Нагпал А.К. In-silico анализ цис-действующих регуляторных элементов белков, связанных с патогенезом, Arabidopsis thaliana и Oryza sativa . ПЛОС Один. 2017;12(9):e0184523. doi: 10.1371/journal.pone.0184523. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
69. Sehra B, Franks RG. Активность избыточного цис-мотива CArG Box опосредует регуляцию транскрипции SHATTERPROOF2 в течение Arabidopsis thaliana развитие гинецея. Передний. Растениевод. 2017;8:1712. doi: 10.3389/fpls.2017.01712. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
70.
Shore P, Sharrocks AD. Семейство транскрипционных факторов MADS-box. Евро. Дж. Биохим. 1995; 229:1–13. doi: 10.1111/j.1432-1033.1995.tb20430.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
71. Tang W, Perry SE. Выбор сайта связывания для белка домена MADS растений AGL15: исследование in vitro и in vivo. Дж. Биол. хим. 2003; 278:28154–28159. [PubMed] [Google Scholar]
72. Dutt M, Dhekney S, Soriano L, Kandel R, Grosser JW. Временной и пространственный контроль экспрессии генов в садовых культурах. Хортик. Рез. 2014;1:14047. doi: 10.1038/hortres.2014.47. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
73. Ashburner M, et al. Генная онтология: инструмент унификации биологии. Джин Онтол. Консорциум. Нац. Жене. 2000;25(1):25–29. дои: 10.1038/75556. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
74. Сингх Д.П., Филардо Ф.Ф., Стори Р., Джермаков А.М., Ямагучи С., Суэйн С.М. Сверхэкспрессия гена инактивации гиббереллина изменяет развитие семян, экспрессию гена KNOX и развитие растений у арабидопсиса.
Физиол. Растение. 2010;138(1):74–90. [PubMed] [Google Scholar]
75. Томас С.Г., Филлипс А.Л., Хедден П. Молекулярное клонирование и функциональная экспрессия гиббереллин-2-оксидаз, многофункциональных ферментов, участвующих в дезактивации гиббереллина. проц. Нац. акад. науч. 1999;96:4698–4703. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
76. Swain SM, Reid JB, Kamiya Y. Гиббереллины необходимы для развития зародышей и семян гороха. Плант Дж. 1997; 12: 1329–1338. [Google Scholar]
77. Backiyarani S, Sasikala R, Sharmiladevi S, Uma S. Расшифровка молекулярного механизма партенокарпии у Musa spp. через сеть белок-белковых взаимодействий. науч. Респ. 2021; 11:14592. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
78. Pomares-Viciana T, Del Rio-Celestino M, Roman B, Die J, Pico B, Gomez P. Первый подход РНК-секвенирования к изучению завязывания плодов и партенокарпии в зухини ( Cucurbita pepo L.) BMC Plant Biol. 2019;19:61. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
79.
Chen X, et al. Сравнительный транскриптомный анализ дает представление о молекулярных механизмах развития партенокарпических плодов баклажана ( Solanum melongena L.) PLoS One. 2017;12(6):e0179491. doi: 10.1371/journal.pone.0179491. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
80. Онг-Абдулла М., Ордвей Дж. М., Цзян Н. Метилирование транспозонов с потерей кармы лежит в основе сомаклонального варианта масличной пальмы в мантии. Нац. 2015; 525: 533–537. doi: 10.1038/nature15365. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
81. Sommer H, et al. Дефициенс, гомеозисный ген, участвующий в контроле морфогенеза цветка у Antirrhinum majus : белок проявляет гомологию с факторами транскрипции. EMBO J. 1990; 9: 605–613. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
82. Ампома-Двамена С., Моррис Б.А., Сазерленд П., Вейт Б., Яо Дж.Л. Понижающая регуляция TM29, гомолога томата SEPALLATA , вызывает развитие партенокарпических плодов и цветочную реверсию.
Завод Физиол. 2002; 130: 605–617. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
83. Yao JL, Dong YH, Morris B. Производство партенокарпических яблочных плодов, обусловленное мутациями вставки транспозона в факторе транскрипции MADS-box. проц. Натл. акад. науч. США. 2001; 98: 1306–1311. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
84. Basssel GW, Mullen RT, Bewley JD. Procera является предполагаемым мутантом DELLA томатов ( Solanum lycopersicum ): воздействие на семена и вегетативные растения. Дж. Эксп. Бот. 2008; 59: 585–593. [PubMed] [Google Scholar]
85. Папонов И.А., Тил В.Д., Требар М., Блилоу И., Пальме К. Модификаторы оттока ауксина PIN: эволюционные и функциональные перспективы. Тенденции Растениевод. 2005; 10: 170–177. [PubMed] [Академия Google]
86. Blilou I, et al. Сеть посредников оттока ауксинов PIN контролирует рост и формирование паттерна в корнях арабидопсиса. Природа. 2005; 433:39–44. [PubMed] [Google Scholar]
87.
Mounet F, et al. Понижающая регуляция одного транспортного белка оттока ауксина в томате вызывает преждевременное развитие плодов. Дж. Эксп. Бот. 2012;63(13):4901–4917. doi: 10.1093/jxb/ers167. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
88. Liu Z, et al. Семейство генов WD40 у картофеля ( Solanum Tuberosum L.): полногеномный анализ и идентификация антоцианов и WD40, связанных с засухой. Агрономия. 2020;10(3):401. doi: 10.3390/agronomy10030401. [CrossRef] [Google Scholar]
89. Kiba T, Naitou T, Koizumi N, Yamashino T, Sakakibara H, Mizuno T. Комбинаторный микрочиповый анализ, выявляющий гены арабидопсиса, участвующие в цитокининовых реакциях через схему His→Asp-фосфорного реле. Физиология клеток растений. 2005; 46: 339–355. doi: 10.1093/pcp/pci033. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
90. Ding J, et al. Цитокинин-индуцированное развитие партенокарпических плодов томата частично зависит от усиленного биосинтеза гиббереллина и ауксина.
ПЛОС Один. 2013;8(7):e70080. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
91. Hu B, Jin J, Guo AY, Zhang H, Luo J, Gao G. GSDS 2.0: обновленный сервер визуализации признаков генов. Биоинформатика. 2015;31(8):1296–1297. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
92. Lescot M, Dehais P, Thijs G, Marchal K, Moreau Y, Van de Peer Y, Rouze P, Rombauts S. PlantCARE, база данных растений cis- действующие регуляторные элементы и портал инструментов для анализа промоторных последовательностей in silico. Нуклеиновые Кислоты Res. 2002;30(1):325–327. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
93. Higo K, Ugawa Y, Iwamoto M, Korenaga T. База данных растительных цис-действующих регуляторных элементов ДНК (PLACE): 1999. Nucleic Acids Res. 1999;27(1):297–300. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
94. Bailey TL, Johnson J, Grant CE, Noble WS. MEME Suite. Нуклеиновые Кислоты Res. 2015;43(1):39–49. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
95.
Buske FA, Boden M, Bauer DC, Bailey TL. Назначение ролей регуляторным мотивам ДНК с использованием сравнительной геномики. Биоинформатика. 2010;26(7):860–866. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
96. Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C, Tamura K. MEGA X: молекулярно-эволюционный генетический анализ на вычислительных платформах. Мол. биол. Эвол. 2018;35:1547–1549. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
97. Conesa A, Götz S, García-Gómez JM, Terol J, Talón M, Robles M. Blast2GO: универсальный инструмент для аннотирования, визуализации и анализа в функциональной геномике исследовать. Биоинформатика. 2005;21:3674–3676. [PubMed] [Академия Google]
98. Канехиса М., Сато Ю. Картограф KEGG для определения клеточных функций по белковым последовательностям. Белковая наука. 2020;29:28–35. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
99. Gasteiger E, Hoogland C, Gattiker A, Wilkins MR, Appel RD, Bairoch A. Инструменты идентификации и анализа белков на сервере ExPASy.
В: Уокер Дж. М., редактор. Справочник по протоколам протеомики. Справочники по протоколам Springer Humana Press; 2005. [Google Scholar]
100. Mistry J, et al. Pfam: база данных семейств белков в 2021 г. Nucleic Acids Res. 2021;49(Д1): Д412–Д419. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
101. Kelley LA, Mezulis S, Yates CM, Wass MN, Sternberg MJ. Веб-портал Phyre2 для моделирования, прогнозирования и анализа белков. Нац. протокол 2015; 10: 845–858. doi: 10.1038/nprot.2015.053. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
102. Beier S, Theil T, Munch T, Scholz U, Mascher M. MISA-web: веб-сервер для прогнозирования микроспутников. Биоинформатика. 2017;33(16):2583–2585. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
103. Das R, Arora V, Sarika Jaiswal MA, Iquebal UBA, Fatma S, Singh R, Shil S, Rai A, Kumar D. PolyMorphPredict : универсальный веб-инструмент для быстрого обнаружения полиморфных микросателлитных маркеров из всего генома и данные транскриптома.