Производство спирта: Технологии производства спирта

Содержание

1. Производство спирта / КонсультантПлюс

1. Производство спирта

198.

Аппаратчик выпаривания;

аппаратчик перегонки и ректификации спирта;

аппаратчик процесса брожения;

варщик;

оператор выращивания чистой культуры дрожжей;

оператор приготовления растворов питательной среды и солей;

сепараторщик

Полукомбинезон с рубашкой для защиты от общих производственных загрязнений и механических воздействий из хлопчатобумажных или смешанных тканей

1

Сапоги резиновые

1 пара

Перчатки резиновые

дежурные

Перчатки с полимерным покрытием или рукавицы комбинированные с усилительными накладками

12 пар

199.

Машинист дробильных установок;

солодовщик

Костюм для защиты от общих производственных загрязнений и механических воздействий из хлопчатобумажных или смешанных тканей

2

Фартук из хлопчатобумажных или смешанных тканей с водоотталкивающей пропиткой с нагрудником

2

Сапоги резиновые

1 пара

Перчатки с полимерным покрытием или рукавицы комбинированные с усилительными накладками

12 пар

200.

Мельник

Костюм или комбинезон для защиты от общих производственных загрязнений и механических воздействий из хлопчатобумажных или смешанных тканей

1

Сапоги резиновые

1 пара

Перчатки с полимерным покрытием или рукавицы комбинированные с усилительными накладками

12 пар

201.

Подготовитель пищевого сырья и материалов

При выполнении работы по мойке картофеля:

Костюм брезентовый с водоупорной пропиткой или костюм из хлопчатобумажных или смешанных тканей с водоотталкивающей пропиткой

1

Сапоги резиновые

1 пара

Перчатки с полимерным покрытием или рукавицы комбинированные с усилительными накладками

12 пар

202.

Приготовитель мелассного сусла;

приготовитель питательных растворов

Костюм для защиты от растворов кислот из хлопчатобумажных или смешанных тканей с кислотозащитной пропиткой

1

Фартук из хлопчатобумажных или смешанных тканей с кислотозащитной пропиткой с нагрудником

2

Сапоги резиновые кислотостойкие

1 пара

Перчатки с полимерным покрытием или рукавицы комбинированные с усилительными накладками

12 пар

203.

Растильщик грибницы

Полукомбинезон с рубашкой для защиты от общих производственных загрязнений и механических воздействий из хлопчатобумажных или смешанных тканей

1

Фартук из хлопчатобумажных или смешанных тканей с нагрудником

1

Сапоги резиновые

1 пара

Перчатки с полимерным покрытием или рукавицы комбинированные с усилительными накладками

12 пар

Усиливается контроль за деятельностью производителей этилового спирта

Сенаторы одобрили изменения в закон о государственном регулировании производства и оборота этилового спирта и спиртосодержащей продукции.


Совет Федерации одобрил Федеральный закон «О внесении изменений в Федеральный закон «О государственном регулировании производства и оборота этилового спирта, алкогольной и спиртосодержащей продукции и об ограничении потребления (распития) алкогольной продукции» и о проведении на территории Калининградской области эксперимента по маркировке алкогольной продукции федеральными специальными марками». Совершенствуется порядок применения норм минимального использования производственной мощности в отношении основного технологического оборудования для производства этилового спирта.

Смотрите также

Документ внесен сенаторами РФ Анатолием Артамоновым, Артамонов
Анатолий Дмитриевичпредставитель от исполнительного органа государственной власти Калужской области

Сергеем Рябухиным, Рябухин
Сергей Николаевичпредставитель от законодательного (представительного) органа государственной власти Ульяновской области Андреем Епишиным, Епишин
Андрей Николаевичпредставитель от законодательного (представительного) органа государственной власти Тверской области Константином Долговым, Долгов
Константин Константиновичпредставитель от исполнительного органа государственной власти Мурманской области Ахматом Салпагаровым, Салпагаров
Ахмат Анзоровичпредставитель от законодательного (представительного) органа государственной власти Карачаево-Черкесской Республики
Валерием Семеновым
. Семенов
Валерий Владимировичпредставитель от законодательного (представительного) органа государственной власти Красноярского края

Как сообщил первый заместитель председателя Комитета СФ по бюджету и финансовым рынкам Сергей Рябухин, вносятся изменения, направленные на усиление контроля за деятельностью производителей этилового спирта.

Уточняются определения таких основных понятий, как мощность основного технологического оборудования для производства этилового спирта или алкогольной продукции, норма минимального использования производственной мощности, приостановление использования и уведомление о приостановлении или возобновлении использования такого оборудования.

Не допускается производство этилового спирта, если квартальный объем не соответствует норме минимального использования производственной мощности (70 процентов). В случае проведения ремонта основного технологического оборудования для производства этилового спирта организация уведомляет об этом лицензирующий орган по телекоммуникационным каналам связи в форме электронного документа, подписанного квалифицированной электронной подписью, до даты начала ремонта. При соблюдении определенных условий лицензирующий орган не учитывает период такого ремонта при установлении факта несоблюдения организацией нормы минимального использования производственной мощности технологического оборудования. Несоблюдение организацией, производящей этиловый спирт, нормы минимального использования производственной мощности устанавливается в качестве основания для аннулирования лицензии на производство и оборот этилового спирта, алкогольной и спиртосодержащей продукции.

Определяются признаки осуществляющих производство этилового спирта организаций, входящих в группу организаций (принадлежность одной из организаций более 70 процентов акций или долей в уставном капитале других организаций, осуществляющих производство этилового спирта, при этом суммарная производственная мощность основного технологического оборудования для производства этилового спирта группы организаций должна составлять не менее 20 миллионов декалитров в год).

Организациям, входящим в группу организаций, и организациям, осуществляющим производство алкогольной продукции с использованием этилового спирта, в случае невозможности соблюдения нормы минимального использования производственной мощности предоставляется возможность направить уведомление в форме электронного документа о приостановлении и возобновлении использования основного технологического оборудования для производства этилового спирта или алкогольной продукции с использованием этилового спирта. Порядок направления в лицензирующий орган таких уведомлений будет утверждаться уполномоченным федеральным органом исполнительной власти.

Закрепляется возможность проведения эксперимента, предусматривающего применение в течение определенного периода специального регулирования в отношении маркировки федеральными специальными марками ввозимой в Российскую Федерацию алкогольной продукции с определением круга лиц и территории, на которые распространяется это специальное регулирование. Положение о проведении такого эксперимента должно утверждаться Правительством Российской Федерации.

Предписывается провести на территории Калининградской области эксперимент по маркировке федеральными специальными марками ввозимой в Российскую Федерацию алкогольной продукции, помещенной под таможенную процедуру таможенного склада, продолжительностью с 1 июня 2021 года по 31 мая 2023 года. Определены цели проведения эксперимента, его участники, условия, при которых маркировка алкогольной продукции, ввозимой в Российскую Федерацию осуществляться не будет. Правительству РФ надлежит утвердить положение о проведении эксперимента, в котором определить участников эксперимента, условия их участия в эксперименте, порядок проведения эксперимента и представления отчета о результатах его проведения.

Организациям, имеющим на 1 июля 2021 года действующую лицензию на производство, хранение и поставки произведенного этилового спирта (за исключением винного, виноградного, плодового, коньячного, кальвадосного, вискового дистиллятов) или на производство этилового спирта для производства фармацевтической субстанции спирта этилового (этанола), предоставлено право продолжения производственной деятельности при условии выполнения ими нормы минимального использования производственной мощности, рассчитываемой по правилам Федерального закона. При этом установлена обязанность этих организаций подать до 31 октября 2021 года заявление о переоформлении лицензий, предусматривающее установление производственной мощности на квартал.

Обеспечение качества этилового спирта как лекарственного средства | Олефир

1. Яровенко ВЛ, ред. Технология спирта. М.: Колос; 2002.

2. Дорош АК, Лысенко ВС. Производство спиртных напитков. Киев: Либiдь; 1995.

3. Onuki S, Koziel JA, van Leeuwen J, Jenks WS, Grewell DA, Cai L. Ethanol production, purification, and analysis techniques: a review. Agricultural and Biosystems Engineering Conference Proceedings and Presentations. Iowa State University; 2008.

4. Вильданов ФШ, Латыпова ФН, Чанышев РР, Николаева СВ. Современные методы получения биоэтанола. Башкирский химический журнал. 2011;18(2):128–34.

5. Черепов ЕВ, Лобода АВ, Короткова ТГ. Технология производства биоэтанола и абсолютного спирта для пищевой и медицинской промышленности. Известия ВУЗов. Пищевая технология. 2010;(5–6):47–50.

6. Чачина СБ, Двоян АВ. Получение биоэтанола из пищевого сырья. Омский научный вестник. 2014;(2):224–8.

7. Рудаков ОБ, Никитина СЮ. Тренды в аналитическом контроле качества питьевого этанола. Аналитика и контроль. 2017;21(3):180–96.

8. Савчук СА, Колесов ГМ. Маркеры природы этилового спирта: хроматографические методы их обнаружения. Журнал аналитической химии. 2005;60(12):1239–50.

9. Муратшин АМ, Шмаков ВС, Тырсин ЮА. Определение природы этанола методом хромато-масс-спектрометрии. Пиво и напитки. 2005;(6):40–2.

10. Гунар ОВ, Сахно НГ. Антисептические лекарственные средства: применение в медицинской практике, экспертиза и контроль качества. М.: ПОЛИГРАФ-ПЛЮС; 2014.

Технология производства продуктов брожения. Производство этилового спирта

Для производства спирта используют любое крахмалсодержащее сырье (все виды зерновых культур, картофель). Также используют сахаросодержащее сырье: свеклосахарную, тростниковую, сырцовую мелассу, сахар-сырец и др.

Технология производства этилового спирта состоит из ряда последовательных стадий:

  1. подготовка крахмалсодержащего сырья,
  2. разваривание крахмалсодержащего сырья,
  3. осахаривание разваренной массы,
  4. приготовление дрожжей,
  5. сбраживание осахаренного сусла,
  6. выделение спирта из бражки,
  7. ректификация.

Технологическая блок-схема производства спирта из зерна и картофеля приведена на рисунке.

Технологическая схема производства этилового спирта из зерна и картофеля

Подготовка крахмалсодержащего сырья включает его очистку от примесей, измельчение зерна на молотковых или вальцовых дробилках до частиц размером менее 3 мм. Очистка картофеля происходит на гидравлическом транспортере, затем его моют в картофелемоечных машинах и измельчают на молотковых дробилках или картофелетерках.

Измельченное сырье смешивается с теплой водой в соотношении 1 : 2,5–3,5. После перемешивания зерновой замес (или картофельная кашица) поступает в аппарат для разваривания, цель которого заключается в разрушении клеточной структуры сырья и растворении крахмала. Разваривание проводят в цилиндроконических аппаратах при нагревании острым паром под давлением не менее 0,4–0,6 МПа.

Процесс разваривания может проводиться периодическим, полунепрерывным или непрерывным способами. Наиболее распространено непрерывное разваривание. Измельченное сырье подогревается сначала вторичным, затем острым паром до температуры разваривания и выдерживается при этой температуре, продвигаясь по варочным аппаратам.

После 1ч пропаривания при 90 °С в результате открытия нижнего клапана и резкого падения давления происходит как бы взрыв пропаренного сырья и оно продавливается в аппарат (затиратель).

Разваренную массу охлаждают до температуры +57…61 °С (в зависимости от вида осахаривающего материала и способа осахаривания). Осахаривание охлажденной разваренной массы осахаривающими материалами (солодовым молоком или ферментными препаратами) проводят периодическим или непрерывным способом.

В результате получают продукт – сусло спиртового производства. Оно имеет массовую долю сухого вещества 16-18%, в том числе 13-15% сбраживаемых Сахаров. Осахаренное сусло (затор) охлаждают до температуры +18…22 °С в теплообменниках или с помощью вакуума.

Вода для производства спирта | Экодар

Вода является одной из основных составляющих при производстве спирта, водки и других крепких напитков. Она используется для обеспечения технологического процесса и как сырье.

Спиртовые заводы расходуют большое количество воды. Поэтому важно правильно подбирать установки фильтрации, чтобы обеспечить высокое качество очистки и необходимую производительность. Не менее важны и применяемые технологии, так как от них зависит возможность удаления из воды загрязнений в высокой концентрации.

Универсальной технологией очистки воды для производства спирта будет использование установок обратного осмоса. Это молекулярные мембраны, которые при сильном приближении похожи на сетки с очень мелкими ячейками. Размеры ячейки по габаритам сопоставимы с размерами молекулы воды. Так как молекулы загрязняющих веществ и соединений больше, они не проходят через мембрану и утилизируются в канализацию.

Компания Экодар — один из крупнейших в России производителей очистного оборудования для фильтрации воды на пищевых предприятиях, ликеро-водочных и спиртовых заводах. Промышленные установки обратного осмоса производства нашей компании могут очищать десятки кубометров воды в час. Этого достаточно для удовлетворения потребностей любого производства.

Какие показатели влияют на производство спирта

Для изготовления спирта из растительного сырья и крепких спиртных напитков важны несколько показателей воды.

Жесткость

Это один из наиболее важных показателей в спиртовом производстве. Определяется как количество катионов кальция и магния в водопроводной или скважинной воде. Особенность в том, что в спирте соли жесткости растворяются хуже. Поэтому если не предпринять меры к умягчению воды, в результате получится перенасыщенный раствор. Кальций и магний перейдут в твердую форму и образуют осадок в конечном продукте.

Кроме того, жесткая вода приводит к образованию накипи. Под действием высокой температуры и по мере уменьшения давления бикарбонат кальция распадается, образуя карбонат. Он мало растворим в спирте и спиртовом растворе, в результате чего переходит в твердую форму и образует белесый налет на емкости.

Наличие солей жесткости негативно отражается на качестве мытья стеклянной тары для спирта. Если использовать жесткую воду, моющие растворы в ней будут работать хуже. Следовательно, получится перерасход, который увеличивает затраты на технологический процесс. Также по мере сушки минеральный налет будет образовываться во время испарения воды.

В спиртовом производстве крайне не рекомендуется использовать воду, жесткость которой превышает 0,2 мг-экв на литр. Для умягчения можно использовать фильтры с ионообменной смолой вкупе с установками обратного осмоса. Полученная вода будет не только не только умягченной, но и полностью очищенной от любых примесей.

Общая минерализация воды

На внешний вид спирта и готового продукта из него оказывают влияние растворенные минеральные вещества, которые присутствуют в воде. Они могут изменить прозрачность, вкус и другие свойства. Например:

  • Хлорид натрия придает конечному продукту соленый привкус;
  • Сульфат натрия делает продукт более горьким;
  • Сульфат кальция делает воду вяжущей.

Некоторые вещества изменяют не вкус, а цвет продукции. Например, если в воде присутствует растворенное железо, при контакте с кислородом оно начинает окисляться и переходит в трехвалентную форму. Образовавшаяся в воде взвесь окрашивает ее в характерный рыжеватый цвет.

Количество сухого остатка, то есть общая минерализация, устанавливается техническими условиями, санитарными нормами и стандартами для спиртового производства.

Молекулярная мембрана в обратном осмосе позволяет полностью деминерализовать воду, приблизив ее по составу к дистиллированной. Впоследствии ее можно минерализовать с помощью специальных добавок или картриджей.

Какие фильтры выбрать для установки на предприятии

Наша компания индивидуально проектирует и монтирует установки обратного осмоса высокой производительности. Но в ассортименте доступны также готовые к использованию комплексы оборудования. Они имеют доступную цену и легко интегрируются в технологический процесс. Поэтому можно оснастить производство современными фильтрами с молекулярными мембранами в минимальные сроки.

Для заказа доступны:

  • Классические фильтры, которые могут очищать определенное количество воды в день. В зависимости от модели с их помощью можно отфильтровать 750–3000 литров воды. Этого достаточно для небольшого производства (например, Осмос 400).
  • Фильтры с дополнительными элементами. Это стандартные очистные установки для водоподготовки на спиртовых завода, опционально оснащенные баками разной емкости для хранения запаса очищенной воды. Они обеспечивают залповые потребности в воде. К таким фильтрам относятся модели, маркированные индексом S. Например, Осмос 800S.
  • Компактные промышленные установки. Предназначены для обеспечения потребностей средних спиртовых производств. Производительность установки варьируется в зависимости от пожеланий заказчика. Максимально такая система может очистить до 1 кубометра воды в час.

Все установки обратного осмоса, которые используются на промышленных предприятиях, работают автоматически. Управление процессами возложено на микроконтроллер, в котором заложена специальная программа. Минимизация человеческого вмешательства в работу системы дает возможность уменьшить себестоимость процесса и, как следствие, стоимость готового продукта.

Как оформить заявку

Хотите купить фильтр обратного осмоса и качественно очищать воду для производства спирта? Обращайтесь за помощью к менеджерам отдела по работе с клиентами компании Экодар. Связаться с сотрудником можно по телефону или через форму на сайте. Помимо фильтров, мы предоставляем услуги по монтажу оборудования на объекте и интеграции фильтров в технологический процесс.

У заводов хотят отобрать лазейки для производства «левого» спирта

Заводам могут установить минимальную норму производства этилового спирта, за невыполнение которой их лишат лицензии. Законопроект об этом Госдума рассмотрела в первом чтении 27 января. Как это поможет в борьбе с нелегальным оборотом алкоголя, разобралась «Парламентская газета».

Работайте без остановок

Поправки в закон о госрегулировании оборота этилового спирта разработала группа сенаторов во главе с председателем Комитета Совета Федерации по бюджету и финрынкам Анатолием Артамоновым. Документ запрещает спиртзаводам приостанавливать работу. Сейчас такое право у них есть — компании обязаны просто прислать в лицензирующий орган уведомление, и только.

В довесок предложено уточнить в законе определение нормы минимального использования производственной мощности. Сейчас под ней подразумевают минимально возможный годовой объём производства продукции на принадлежащем заводу оборудовании, выраженный в декалитрах. Точные лимиты устанавливает Правительство: согласно постановлению, которое вступило в силу 1 января 2021 года, для этилового спирта он составляет 50 процентов производственной мощности.

Сенаторы предлагают рассчитывать минимальную норму для этанола ежеквартально и закрепить лимит прямо в законе: не менее 70 процентов производственной мощности. Выполнение этой нормы сенаторы хотят сделать обязательной: для этого в законе пропишут, что не выполнять её запрещено, в противном случае компании лишатся лицензий.

Всё по-белому

Эти меры позволят исключить практику, когда на легальном оборудовании производят спирт для теневой продажи, считают парламентарии. Речь идёт о ситуациях, когда спиртзаводы имеют большие мощности, но показывают очень низкую загрузку — 50, 30, иногда даже 20 процентов, пояснил один из авторов инициативы, первый замглавы Комитета Совета Федерации по бюджету и финрынкам Сергей Рябухин.

«Предприятие в принципе не может существовать на рынке, имея такую загрузку, в этом случае оно работает себе в убыток и приходит к банкротству. Но чудесным образом предприятие благополучно продолжает свою деятельность в течение многих лет. Это значит, что завод выпускает неучтённый этиловый спирт, из которого потом производится нелегальная алкогольная продукция», — пояснил сенатор.

Комитет Госдумы по экономической политике, промышленности, инновационному развитию и предпринимательству поддержал инициативу, но предложил ко второму чтению предусмотреть в документе форс-мажорные ситуации. «Например, когда из-за аварии или нехватки сырья добросовестный производитель не сможет достичь показателя», — уточнил на заседании член комитета Александр Максимов.

Стекло будут клеймить

Также Госдума 27 января приняла в первом чтении законопроект, обязывающий производителей стеклянной тары маркировать свою продукцию уникальными знаками или клеймами завода-изготовителя.

Документ предполагает, что информацию о клеймах будут вносить в специальный реестр. Тару без маркировки конфискуют. А чтобы производители нелегального алкоголя не перешли на пластиковые бутылки, законопроект запрещает производство спиртных напитков в полимерной таре.

Читайте также:

• Стеклянную тару хотят маркировать • За продажу крепкого алкоголя в пластиковых бутылках хотят штрафовать

«Это позволит нанести ещё один удар по незаконному производству крепкого алкоголя», — подчеркнул Рябухин.

Он рассказал депутатам, что ещё несколько лет назад, когда парламент только начал бороться с нелегальным оборотом спиртного, более 52 процентов алкоголя на рынке приходилось на серую зону. Теперь в тени только 28 процентов — меньше, но и это приличная цифра.

«Мы шаг за шагом сужаем возможности для криминального производства спиртного. Ещё у нас есть несколько законопроектов, в том числе поправки в КоАП — они сейчас прорабатываются», — предупредил Сергей Рябухин.

Сырьё для производства спирта » SpecAvto — Спецавто — Бетононасосы

Спирт пищевой является продуктом переработки сельскохозяйственных культур, содержащих крахмал, таких как:

  1.  Зерновые культуры (рожь, пшеница, просо, овес и прочее)
  2. Картофель
  3. Виноградные и плодово-ягодные культуры
  4. Нефтепродукты и древесина (технический спирт)

В настоящее время, большая часть спирта изготавливается из вышеперечисленных культур. Выбирая сырье нужно в первую очередь учитывать его доступность и возможность обеспечения данным сырьем завода в требуемых для производства объемах.

При производстве спирта используется только пищевое сырье. Наиболее экономичным вариантом сырья является картофель. Крахмал, содержащийся в картофеле,  быстро разваривается, усахаривается и клейстеризуется. Кроме того, картофель отличается повышенной урожайностью. С одной единицы посевной картофеля получается в два-три раза больше спирта, чем с такой же площади зерновых культур.

Так же для производства спирта используют:

  • ячмень,
  • пшеницу,
  • овес,
  • кукурузу,
  • просо,
  • сахарную потоку,
  • сахарную свеклу.

Иногда  используют виноградные и плодово-ягодные культуры, топинамбур и прочее сырье, обогащенное углеводами.

Для производства технического спирта используют нефтепродукты и древесину, которые подвергают кислотному гидролизу. Использовать технический спирт в пищевых целях запрещено, поскольку он содержит большое количество вредных примесей.

Производство спирта включает три основных этапа:

  1. Подготовительный этап – очистка сырья от примесей и приготовление солода;
  2. Основной этап – варение сырья, содержащего крахмал, осахаривание крахмала, сбраживание получившийся массы,  перегонка бражки и получение сырого спирта;
  3. Завершающий этап – ректификация.

Сырой спирт, полученный на основном этапе,  не может быть использован в пищевых целях, поскольку в нем содержатся вредные примеси: спирт метиловый, сивушные масла, сложные эфиры. Многие из этих примесей ядовиты, к тому же они придают спирту отталкивающий запах. По этой причине спирт подвергается ректификации – очистке.

Все примеси условно разделяют на хвостовые, промежуточные и головные. Хвостовые примеси характеризуются повышенной температурой кипения, если сравнивать с этиловым спиртом. К ним относят спирт метиловый и сивушные масла. Головные примеси отличаются от этилового спирта более низкой температурой кипения.

В процессе очистке сырого спирта вредные примеси отделяются, и повышается доля спирта в готовом продукте. Сырой спирт – 88%, готовый продукт – 96%.

Производство спирта из двуокиси углерода: метанол как топливо и химическое сырье

https://doi.org/10.1016/j.joule.2020.11.005Получить права и содержание

Контекст и масштаб

Как ученые и инженеры, изучающие CO 2 конверсионных технологий важно понимать основанные на CO 2 методы производства важнейших основных химических веществ, а производство спирта из возобновляемых источников является одной из немногих технологий использования CO 2 , развернутых в промышленных масштабах.Спирты являются строительными блоками для материалов, с которыми мы сталкиваемся каждый день; а среди спиртов метанол является критическим химическим промежуточным звеном для производства полимеров, пластмасс, волокон и смол и обещает стать потенциальным возобновляемым жидким топливом. В настоящее время большая часть метанола производится с использованием синтез-газа, полученного из природного газа. Его альтернативное производство с использованием CO 2 , воды и возобновляемой электроэнергии дает возможность продвинуть целые отрасли к углеродной нейтральности. Анализируя текущий этап развития, эта перспектива представляет цели исследований и разработок для дальнейшего использования технологий преобразования CO 2 в метанол.Работая вместе для достижения этих целей, мы можем продвинуть человечество к внедрению углеродно-нейтральных спиртов и топлива с низким содержанием углерода.

Резюме

Производство возобновляемых спиртов из воздуха, воды и солнечного света представляет собой путь к использованию захваченного диоксида углерода для производства основных химикатов и хранения возобновляемой энергии в химических связях жидкого топлива. Преимущество технологий, использующих CO 2 напрямую, электролиз CO 2 , а также гидрирование CO 2 в сочетании с электролизом H 2 O, состоит в том, что требуется только CO 2 , H 2 O и возобновляемая электроэнергия в качестве исходных материалов с O 2 в качестве единственного побочного продукта.Среди спиртов возобновляемый метанол получил наибольшее развитие и анализ в химической промышленности, потому что в настоящее время он является продуктом синтез-газа, который можно адаптировать для прямого использования CO 2 . С этой точки зрения мы сравниваем электролиз CO 2 на возобновляемых источниках энергии и гидрирование CO 2 с существующим методом производства метанола из синтез-газа с точки зрения затрат и жизненного цикла CO 2 , анализируя недавнюю литературу, чтобы определить цели исследования, которые позволяют дальнейшие исследования. увеличить масштаб.Обзор отрасли показывает, что гидрогенизация CO 2 является одной из наиболее близких технологий использования CO 2 к широкомасштабному внедрению. Далее мы обсудим эти системы гидрирования CO 2 и катализаторы, которые ими управляют, с рекомендациями по дальнейшему развитию и расширению.

Ключевые слова

CO 2 Утилизация

2 CO 2

CO 2 Электролиз

CO 2

CO 2

Метанол

Солнечное топливо

Чистая энергия

Техноэкономический анализ

Анализ жизненного цикла

Устойчивость

Устойчивое развитие

Рекомендуемые статьиСсылки на статьи (0)

© 2020 Elsevier Inc.

Рекомендуемые статьи

Ссылки на статьи

Frontiers | Производство этанола отдельными кишечными микроорганизмами и молочнокислыми бактериями, растущими в различных условиях питания

Введение

Неалкогольная жировая болезнь печени (НАЖБП) определяется как избыточное накопление триглицеридов в печени людей, не употребляющих большое количество алкоголя (<20 г этанола в день) (McCullough, 2006; WGO, 2012). Он распространен у лиц с ожирением и диабетом (Wanless and Lentz, 1990; Bellentani et al., 1994; Кларк и др., 2002 г.; Читтури и др., 2004). Было описано, что микробиота кишечника способствует развитию НАЖБП и неалкогольного стеатогепатита (НАСГ) с помощью различных механизмов, включая избыточный бактериальный рост в тонкой кишке (СИБР) и нарушение целостности кишечного барьера, что приводит к увеличению транслокации эндотоксина (ЛПС) и прогрессированию НАЖБП в НАСГ. Солга и Диль, 2003).

Микробиота кишечника человека содержит от 10 13 до 10 14 микроорганизмов, принадлежащих к более чем 1000 известным видам.Доминирующими бактериальными филотипами являются Firmicutes, Bacteroidetes и Actinobacteria (Egert et al., 2006; Gill et al., 2006). Изменения микробиоты кишечника наблюдались у пациентов с ожирением и НАЖБП по сравнению со здоровыми людьми. Увеличение общего количества лактобацилл и снижение количества Bacteroidetes были связаны с ожирением, в то время как увеличение количества было связано с худобой (Armougom et al., 2009). Некоторые видов Bifidobacterium или видов Lactobacillus были связаны с нормальным весом ( Bifidobacterium animalis ), а видов Lactobacillus reuteri были связаны с ожирением (Million et al., 2012). У пациента с неалкогольным стеатогепатитом (НАСГ) в анамнезе, трансплантацией печени, стентом печеночной артерии и билиарным стентом выявлена ​​бактериемия Weissella confusa (Harlan et al., 2011). Этанол является одним из доминирующих метаболитов гетеромолочнокислых кишечных микробов. Основываясь на гистологических особенностях поражений печени, связанных с ожирением и алкоголем, Cope et al. (2000) предположили, что причиной НАЖБП может быть этанол, вырабатываемый микробиотой кишечника. Эта идея была дополнительно обсуждена Baker et al.(2010). Согласно их гипотезе, повышенная выработка этанола дисбалансом кишечной микробиоты у людей с ожирением, с одной стороны, и повышенный уровень НАДН в печени, с другой стороны, вызывают экспрессию цитохрома P450 2E1, который посредством образования активных форм кислорода (АФК) вызывает печеночную недостаточность. воспаление.

Микробиота кишечника играет важную роль в сборе энергии хозяином. Сбор энергии и отложение жира были ниже, а выделение калорий с фекалиями было выше у стерильных крыс, чем у обычных крыс (Wostmann et al., 1983). Короткоцепочечные жирные кислоты в слепой кишке и тонком кишечнике обычных мышей были в 75–5000 раз выше, чем в слепой кишке и кишечнике стерильных мышей (Høverstad and Midtvedt, 1986). Короткоцепочечные жирные кислоты и, в частности, бутират играют важную роль в качестве энергетических субстратов для периферических тканей и эпителия толстой кишки, а Bacteroides ssp. и, например, Anaerostipes caccae , по-видимому, являются важными кишечными бактериями, участвующими в производстве короткоцепочечных жирных кислот (Bergman, 1990).Было показано, что пребиотические вещества, такие как лактулоза и инулин, способствуют росту бифидобактерий в крысиной модели НАСГ или у мышей с ожирением, вызванным диетой, что коррелирует со снижением уровня липополисахаридов (ЛПС) (Fan et al., 2005; Cani et al., 2007). Предполагается, что ЛПС участвует в индукции воспаления печени (Bergheim et al., 2008; Baker et al., 2010). Недавно было показано, что инулин предотвращает развитие стеатоза печени на крысиной модели (Sugatani et al., 2012).

Повышенное потребление углеводов, таких как сахароза, глюкоза и фруктоза, коррелирует с признаками метаболического синдрома, такими как ожирение, стеатоз или резистентность к инсулину (Gross et al., 2004; Солга и др., 2004; Либуда и др., 2008). Замена глюкозы на фруктозу вызывала накопление жира в тканях печени (Bergheim et al., 2008). В отличие от глюкозы метаболизм фруктозы не зависит от инсулина (Lim et al., 2010). Поскольку он не дает уровня сытости, сравнимого с глюкозой, он больше участвует в индукции ожирения (Machado and Cortez-Pinto, 2012). Кроме того, кишечное поглощение фруктозы отличается от поглощения глюкозы. GLUT5 был идентифицирован как основная кишечная транспортная система для фруктозы (Douard and Ferraris, 2008).По сравнению с глюкозой поглощение фруктозы ограничено, что приводит к попаданию в толстую кишку при передозировке. У 50% испытуемых производство водорода микробиотой желудочно-кишечного тракта увеличивается при приеме внутрь 30–40 г, что указывает на то, что фруктоза не полностью всасывается в тонком кишечнике и попадает в толстый кишечник, где она метаболизируется микробиотой (Jones et al., 2011).

Целью нашего исследования было оценить продукцию этанола некоторыми желудочно-кишечными бактериями и штаммом дрожжей в различных условиях и обсудить результаты, полученные в отношении алкогольной гипотезы НАЖБП.Для этого мы исследовали производство этанола несколькими определенными кишечными микроорганизмами, растущими на различных источниках углеводов. Те организмы с довольно высоким или постоянным производством этанола были протестированы на влияние пищевых акцепторов электронов (пируват и цитрат) на производство этанола из глюкозы и фруктозы. Наконец, некоторые из применяемых микроорганизмов были проверены на их влияние на ферментацию фруктозы с помощью фекальных суспензий, приготовленных из образцов стула четырех здоровых добровольцев с избыточным весом.

Материалы и методы

Микробы и условия роста

A. caccae DSM 14662 (Schwiertz et al., 2002) и Bacteroides thetaiotaomicron DSM 94168 были получены от DSMZ GmbH, Брауншвейг, Германия. Bifidobacterium ( BI .) Longum NRRL-B- 41409, Lactobacillus ( L .) Acidophilus NRRL-B-4495 и Weissella ( W .) CONTUSA . В-14171 были получены из Северной региональной исследовательской лаборатории (NRRL), Пеория, США. W. confusa был предоставлен NRRL как L. reuteri NRRL-B-14171; однако секвенирование 16S рДНК четко идентифицировало его как W. confusa . L. Plantarum 92380, Enterococcus ( EC .) FeCalis , Escherichia ( E .) CLOI 98082, L. Fermentum 92294 и Saccharomyces ( S .) cerevisiae 56101 были из коллекции культур отдела микробиологии и биотехнологии Института Макса Рубнера (Киль, Германия).Все протестированные микробные штаммы были выделены из кишечника человека, кроме штамма Ec. fecalis, L. fermentum и S. cerevisiae , которые были выделены из сырого молока, кенийского ферментированного продукта Kimere и сыра Harzer соответственно.

A. caccae субкультивировали в среде PYG без резазурина (DSMZ 104: http://www.dsmz.de/microorganisms/medium/pdf/DSMZ_Medium104.pdf) и инкубировали при 37°C в течение 48 часов. B. thetaiotaomicron и Bi. longum субкультивировали в бульоне Уилкинса Чалгрена (Wilkins and Chalgren, 1976) при 37°C в течение 48 часов. L. acidophilus, L. fermentum, L. plantarum и W. confusa размножали в среде ДеМана, Рогозы, Шарпа (MRS) (De Man et al., 1960). Эк. fecalis субкультивировали в среде М17 (Terzaghi and Sandine, 1975), а E. coli размножали в питательном бульоне (Eaton et al., 1995). Все лактобациллы, Ec. fecalis и E. coli инкубировали при 37°С в течение 24 часов. S. cerevisiae размножали в бульоне солодового экстракта (Galloway and Burgess, 1952) и инкубировали в аэробных условиях при 25°C в течение 48 часов.Анаэробные инкубации проводили в анаэробной камере при 37°С.

Бульон Wilkins Chalgren и среда M17 были приобретены у Oxoid (Лондон, Великобритания). Бульон с солодовым экстрактом, питательный бульон, фенол, серная кислота, арабиноза и фруктоза были приобретены у Merck Co. (Дармштадт, Германия).

Глюкоза и лактоза (4- O -(β-D-галактопиранозил)-D-глюкопираноза) были приобретены у Carl Roth GmbH (Карлсруэ, Германия). Лактулоза (4- O -β-D-галактопиранозил-D-фруктофураноза) была приобретена у Molekula Co.(Дорсет, Великобритания), D-(-)-рибоза и инулин (полифруктоза с одним концевым остатком глюкозы, n = ок. 35) от Fluka Co. (Вирджиния, США).

В экспериментах с фекальными суспензиями неомицин добавляли в концентрации 1 мг/мл (Cope et al., 2000).

Пробирки

«Roti-Store Cryoröhrchen» для хранения культур при -80°C были приобретены у Carl Roth GmbH Co. (Карлсруэ, Германия).

Используемая анаэробная камера была произведена компанией Don Whitley Scientific Limited (Западный Йоркшир, Великобритания).

Колонка для ВЭЖХ

Metacarb 87H была приобретена у VWR international Co. (Дармштадт, Германия). Аппарат для высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) был приобретен у Merck-Hitachi (Дармштадт, Германия).

Сохранение культуры

Активированные культуры отдельных микробных штаммов высевали штрихами на питательную среду, содержащую 1,5% агара. После инкубации в течение 48 ч при 37°С для бактериальных штаммов или 72 ч при 25°С для штамма дрожжей колонии меняли местами после микроскопического исследования, переносили в пробирки Roti-Store Cryo и хранили при -80°С.

Ферментация в среде для бактерий толстой кишки (MCB)

Ферментацию проводили в среде для бактерий толстой кишки (МКБ) при 37°С в анаэробной камере. Состав среды (gL -1 ): бактериологический пептон, 6,5; соевый пептон 5,0; триптон 2,5; дрожжевой экстракт 3,0; KCl, 2,0; NaHCO 3 , 0,2; NaCl, 4,5; MgSO 4 · 7H 2 O, 0,5; CaCl 2 · 2H 2 O, 0,45; MnSO4·H 2 O, 0,2; FeSO4 · 7H 2 O, 0.005; ZnSO4 · 7H 2 O, 0,005; цистеин-HCl, 0,4; гемин 0,005; менадион, 0,005. Один литр среды содержал 0,5 мл H 3 PO 4 и 2 мл Tween 80. Перед стерилизацией (121°C, 20 мин) pH среды доводили до 5,8. Глюкозу, фруктозу, лактозу, лактулозу, арабинозу, рибозу или инулин использовали в качестве единственных источников энергии и отдельно и асептически добавляли в ферментационную среду в концентрациях 15 г л -1 . Все сахара стерилизовали в автоклаве (210 кПа, 121°С, 20 мин), кроме рибозы и арабинозы, которые стерилизовали фильтрованием через 0.Мембранные фильтры 2 мкм (Van der Meulen et al., 2006a). Соотношение инокуляции составляло 5% для каждого тестируемого штамма. Рост контролировали путем измерения оптической плотности при 620 нм (OD 620 ) после инкубации при 37°C в течение 48 ч для A. caccae DSM 14662 T и Ba. thetaiotaomicron DSM 94168 и в течение 24 ч для всех остальных штаммов. Определение инулина в микробиологических средах проводили модифицированным фенол-сернокислотным методом с использованием инулина в качестве стандарта (Dubois et al., 1956; Masuko et al., 2005).

Пищевые акцепторы электронов цитрат и пируват добавляли в концентрациях 7,5 и 15 г л -1 соответственно.

Подсчет микроорганизмов после ферментации

В конце ферментации 1 мл каждого образца последовательно разбавляли в фосфатно-солевом буфере (0,14 М NaCl, 2,7 мМ KCl, 8,1 мМ Na 2 HPO 4 , 1,8 мМ KH 2 PO 4 4 ; рН 7,4) с шагом 1:10. Сто микролитров соответствующих разведений высевали на подходящие среды: среду MRS с добавлением 1.Для подсчета W. confusa и L. fermentum использовали 5% агар. Планшеты инкубировали в анаэробных условиях при 37°С в течение 3 дней. S. cerevisiae подсчитывали путем посева на чашки с агаром с солодовым экстрактом, дополненным 20 мл 10% раствора молочной кислоты на литр. Планшеты инкубировали при 25°С в течение 5 дней.

Анализы метаболитов

Один мл каждой тестируемой культуры смешивали с 10 мкл раствора Carrez I и 10 мкл раствора Carrez II и центрифугировали при 14 000 × g в течение 10 мин при 4°C.Осветленный слой отделяли и фильтровали через мембранный фильтр 0,2 мкм. Все образцы метаболитов были заморожены при -20°C до проведения анализа. Сахара (гексоза, дисахариды и пентоза), лактат, сукцинат, короткоцепочечные жирные кислоты (ацетат, бутират и пропионат), ацетальдегид и этанол определяли методом ВЭЖХ после разбавления образцов серной кислотой 0,0085 N (1:25) на Колонка Metacarb 87H 7,5 × 300 мм. Подвижной фазой служила серная кислота 0,0085 н со скоростью потока 0,3 мл/мин. Колонку Metacarb для ВЭЖХ соединяли с детектором показателя преломления (RI) и нагревали до температуры 65°C.Для идентификации метаболитов использовали соответствующие стандарты (пример показан на рисунке 1). Для лучшего отделения глицерина при ферментации с S. cerevisiae в качестве подвижной фазы использовали 0,1 N H 2 SO 4 со скоростью потока 0,3 мл/мин. Время удерживания для различных сахаров, кислот и спиртов указано в таблице 1.

Рисунок 1. Разделение отдельных сахаров, кислот и этанола на колонке Metacarb 87H (7,5 × 300 мм) с 0.0085 N H 2 SO 4 при скорости потока 0,3 мл/мин и 65°C .

Таблица 1. Время удерживания различных сахаров, кислот и спиртов, разделенных на колонках Metacarb 87H .

Приготовление фекальных суспензий

Образцы фекалий четырех здоровых добровольцев мужского пола с ожирением были собраны в стерилизованные пластиковые пакеты, которые были запечатаны сразу же после максимально возможного удаления воздуха. Добровольцы имели индекс массы тела (ИМТ) от 28 до 33.У них не было истории лечения антибиотиками в течение последних 6 месяцев и употребления алкоголя. Пакеты доставляли в лабораторию при температуре окружающей среды и подвергали дальнейшей обработке. Двадцать граммов образцов фекалий суспендировали в 100 мл анаэробного фосфатно-солевого буфера (0,14 М NaCl, 2,7 мМ KCl, 8,1 мМ Na 2 HPO 4 , 1,8 мМ KH 2 PO 4 % L-0). цистеина HCl и 0,2% Tween 80, pH 7,4). Два миллилитра гомогенизированной взвеси инокулировали в 10 мл среды MCB с добавлением фруктозы, фруктозы с цитратом, фруктозы с пируватом; фруктозы с неомицином соответственно с последующей инкубацией при 37°С в анаэробных условиях в анаэробной камере в течение 24 ч.Концентрации добавок составляли: фруктоза 15 мг/мл, пируват 15 мг/мл; цитрат 7,5 мг/мл; неомицин 1 мг/мл. Кроме того, 1 мл гомогенизированной взвеси, а также 1 мл ночных культур отдельных штаммов A. caccae, L. acidophilus, L. fermentum или W. confusa , соответственно, инокулировали в 10 мл MCB с добавлением фруктозы. при тех же условиях.

Подсчет различных групп бактерий в образцах свежих фекалий и фекальной суспензии

Один г свежего образца фекалий суспендировали в 99 мл раствора Рингера (6.5 г NaCl, 0,42 г KCl, 0,25 г CaCl 2 и 0,2 г NaHCO 3 ) с добавлением 0,05% L-цистеина HCL с последующим серийным разведением 1:10 в растворе Рингера. Сто микролитров соответствующих разведений распределяли по различным селективным средам и инкубировали в анаэробных условиях следующим образом: общее количество анаэробных бактерий [агар с сердечно-мозговым экстрактом (Merck, Дармштадт, Германия), 37°C/48 ч]; общее количество лактобактерий [агар LAMVAB Hartemink et al. (1997), 37°C/72 ч], всего Enterobacteriaceae [агар с кристаллическим фиолетовым (Merck, Дармштадт, Германия), 37°C/24 ч; общее количество клостридий (усиленный клостридиальный агар, Becton and Dickinson, Гейдельберг, Германия) 37°C/48 ч].

Активность алкогольдегидрогеназы

Активность алкогольдегидрогеназы (АДГ) в фекальных суспензиях определяли в конце периода ферментации (через 24 часа) с помощью «Набора для обнаружения алкогольной дегидрогеназы ab102533» Abcam ® (Кембридж, Великобритания) в соответствии с руководством, предоставленным поставщиком. . Тест основан на взаимном превращении НАДН в НАД + в присутствии спирта. Количество образовавшегося НАД+ можно измерить колориметрически при 450 нм и, при сравнении со стандартной кривой, можно использовать для расчета активности АДГ.Можно обнаружить активность АДГ всего 0,01 мЕд.

Статистический анализ

Данные выражены как среднее значение трех повторностей ± стандартное отклонение (SD). Статистический анализ проводили с помощью программного обеспечения SAS (версия 9.2). Тест Тьюки post-hoc ( P <0,05) использовали для оценки влияния различных видов бактерий, пищевых акцепторов электронов и неомицина на активность АДГ в различных образцах фекальной суспензии.

Результаты и обсуждение

В этом исследовании было отобрано десять микроорганизмов на предмет продукции этанола. A. caccae DSM 14662, Ba. thetaiotaomicron DSM 94168, B. longum NRRL-B-41409, E. coli 98082, L. acidophilus NRRL B-4495. L. plantarum 92380 и W. confusa NRRL-B-14171 были кишечными изолятами, тогда как Ec. fecalis , L. fermentum 92294 и S. cerevisiae 56101 были выделены из пищевых продуктов. Штаммы представляли бактериальные Phyla актинобактерии ( Bifidobacterium ), бактерии ( бактерии ), 70096 ( Anaerostipes, Enterococcus, lactobacillus, weissella ) и протебактерии ( Escherichia ) в виде дрожжей ( Saccharomyces ).

Скрининг на этанол Производство микробных штаммов Выращивание различных углеводов

Рост 10 микробных штаммов на различных источниках углеводов тестировали путем измерения оптической плотности (ОП 620 ), значений рН и остаточных углеводов, оставшихся в конце ферментации после 24 инкубации (48 ч для A. caccae DSM). 14662 и Ba. thetaiotaomicron DSM 94168) (табл. 2). Кроме того, показаны основные продуцируемые метаболиты.Все 9 испытанных бактериальных штаммов были способны ферментировать глюкозу, фруктозу, лактозу и лактулозу. Арабиноза не ферментируется L. acidophilus и W. confusa , рибоза не ферментируется B. thetaiotaomicron DSM 94168, а инулин не ферментируется A. caccae DSM 14662 и E S. cerevisiae был способен ферментировать только глюкозу и фруктозу.

Таблица 2. Особенности роста и метаболизма при 37°C в среде MCB с добавлением различных углеводов, определенные путем измерения ΔOD620, pH, потребляемых углеводов и основного метаболита .

A. caccae, Ec. вообще не производил этанол. fecalis, L. acidophilus и L. plantarum . Небольшие количества были произведены Ba. тетайотаомикрон DSM 94168, Bi. longum NRRL-B-41409 и E. coli из гексоз и из инулина Ba. thetaiotaomicron DSM 94168. Значительное производство этанола оставшимися тремя организмами показано на рисунке 2. L. fermentum продуцировал большое количество этанола из глюкозы и не продуцировал этанол из других углеводов. W. confusa производил довольно большое количество глюкозы и фруктозы. Наибольшее производство этанола наблюдалось у S. cerevisiae из глюкозы и фруктозы, двух углеводов, на которых этот организм мог расти. Анализы других метаболитов (не показаны) показали и подтвердили известную метаболическую активность протестированных микроорганизмов. Газы, однако, не анализировались.

Рисунок 2. Производство этанола из глюкозы и фруктозы, соответственно, микроорганизмами, выращенными в анаэробных условиях на среде МХБ при 37°C .Черный, L. fermentum 92294; розовый, W. confusa NRRL-B-14171; синий, S. cerevisiae 56101.

A. caccae , одна из наиболее распространенных групп бактерий в толстой кишке человека (Falony et al., 2009), была описана как кишечный микроорганизм, продуцирующий бутират (Schwiertz et al., 2002; Duncan et al., 2004). Насколько нам известно, метаболизм пентозы еще не был описан для A. caccae . Наши данные показывают, что обе применяемые пентозы метаболизируются, при этом рибозы больше, чем арабинозы.Бутират, по-видимому, является доминирующим продуктом (таблица 2).

B. thetaiotaomicron , бактерия, хорошо известная как кишечный организм, производит главным образом сукцинат, ацетат и пропионат в результате анаэробной ферментации глюкозы (Kotarski and Salyers, 1981; Van der Meulen et al., 2006a). Дегнан и Макфарлейн (1995) показали, что гексозы метаболизируются более эффективно, чем пентозы. Эти отчеты подтверждаются данными, представленными в таблице 2: мы обнаружили, что сукцинат является доминирующим метаболитом, за исключением двух дисахаридов лактозы и лактулозы, где преобладали ацетат/сукцинат и ацетат соответственно.

Бифидобактерии являются одними из самых распространенных кишечных микроорганизмов: они могут составлять до ок. 3% микробиоты кишечника человека (Van der Meulen et al., 2006b). Было обнаружено, что их метаболизм сахара в основном приводит к образованию ацетата и лактата, однако также описано производство этанола (Van der Meulen et al., 2006a,b; Amaretti et al., 2007; Margolles and Sánchez, 2012). Пентозы легко ферментируются так же, как и инулин (Tamime, 2002). Это согласуется с нашими выводами.Таблица 2 показывает, что ацетат и лактат были получены из гексоз и пентоз, соответственно, тогда как лактат был доминирующим метаболитом из протестированных дисахаридов. Для инулина мы обнаружили, что в основном образуется ацетат.

E. coli относится к семейству Enterobacteriaceae , которые обычно анаэробно разлагают углеводы путем смешанной кислотной ферментации (Böck and Sawers, 1996). Этанол является одним из распространенных конечных продуктов этого пути. Метаболизм пентозы у E.coli , как описано, происходит через пентозофосфатный путь (Fraenkel, 1996). Наши данные (табл. 2) не в полной мере отражают гетерогенность продуцируемых метаболитов. За исключением пентоз, где в основном образуются актетат и лактат, лактат постоянно остается единственным основным образующимся метаболитом.

Эк. fecalis и L. acidophilus являются представителями отряда Lactobacillales . Известно, что они метаболизируют гексозы посредством гомомолочнокислой ферментации (Tamime, 2002; Pot and Tsakalidou, 2009), что объясняет, что из гексоз не образуется этанол, по крайней мере, в условиях достаточного количества субстрата (Buckel, 1999).В наших экспериментах основным метаболитом оказался лактат, за одним исключением: L. acidophilus в основном продуцировал ацетат вместе с лактатом из рибозы (табл. 2).

L. plantarum является факультативным гетеромолочнокислым организмом (Pot and Tsakalidou, 2009). Гексозы метаболизируются путем гомомолочнокислого брожения, в основном с образованием только молочной кислоты. Пентозы метаболизируются посредством гетеромолочной ферментации с образованием молочной кислоты, углекислого газа и уксусной кислоты (Buckel, 1999).Наши результаты согласуются с этим (табл. 2).

L. fermentum и W. confusa являются гетеромолочными организмами (Collins et al., 1993; Pot and Tsakalidou, 2009), которые, как известно, производят молочную и уксусную кислоты из пентоз и молочную кислоту, углекислый газ и этанол из гексозы (Buckel, 1999). Однако L. fermentum принадлежит к группе гетеромолочнокислых лактобацилл, экспрессирующих фермент маннитолдегидрогеназу, что позволяет этим организмам использовать для регенерации NAD(P) + фруктозу непосредственно путем восстановления до маннита (Maicas et al., 2002). В этих условиях уксусная кислота получается из гексоз вместо этанола. Наши данные (табл. 2) показывают, что действительно этанол вместе с лактатом является основным метаболитом обоих организмов при брожении глюкозы. Ферментация фруктозы давала этанол в большом количестве только для W. confusa NRRL-B-14171, тогда как для L. fermentum 92294 было обнаружено, что лактат и маннит продуцируются почти в эквимолярных количествах. Ферментация дисахаридов приводила к эквимолярным количествам ацетата и лактата в обоих организмах.Одни и те же основные метаболиты были также получены из обеих пентоз L. fermentum 92294 и W. confusa NRRL-B-14171 из рибозы. Последний организм не утилизировал арабинозу (табл. 2).

Наконец, S. cerevisiae , типичный для дрожжей, метаболизирует гексозы посредством ферментации этанола, давая только этанол и углекислый газ (Buckel, 1999). В то время как это было подтверждено в наших экспериментах для этанола (диоксид углерода не анализировался), испытанные пентозы и дисахариды, а также инулин вообще не ферментировались (таблица 2).

Влияние пищевых акцепторов электронов на производство этанола

L. fermentum 92294, W. confusa NRRL-B-14171 и S. cerevisiae 56101

Для оценки влияния пищевых акцепторов электронов цитрата и пирувата на выработку этанола были выбраны три значительно продуцирующих этанол микроорганизма L. fermentum 92294 , W. confusa NRRL-B-14171 и S. cerevisiae 56101. Майкас и др. (2002) показали, что внешние акцепторы электронов, такие как фруктоза или пируват, способны компенсировать дефект регенерации NAD(P)H за счет производства этанола, вызванного ферментацией в аэробных условиях.Поскольку мы уже видели (Таблица 2), что L. fermentum 92294, но не W. confusa NRRL-B-14171, способны применять фруктозу в качестве акцептора электронов (при образовании маннита), сравнение этих двух организмов представляется значимым. Кроме того, был протестирован S. cerevisiae , так как он производил большое количество этанола. Все три организма содержали при 37°C в среде MCB со следующими добавками: глюкоза, глюкоза плюс цитрат, глюкоза плюс пируват, фруктоза, фруктоза плюс цитрат, фруктоза плюс пируват.Через 24 часа супернатанты культур подвергали ВЭЖХ для определения остаточного сахара и образующихся метаболитов. Таблица 3 показывает, что L. fermentum 92294 очень эффективно сбраживал применяемые сахара: во всех протестированных условиях в супернатантах было обнаружено лишь небольшое количество глюкозы или фруктозы, что указывает на то, что цитрат или пируват не ферментировали (глюкоза плюс цитрат) или лишь незначительно. (фруктоза плюс цитрат, фруктоза плюс пируват) мешают ферментации. В присутствии глюкозы пируват даже усиливал ферментацию. W. confusa вел себя совсем по-другому: как было видно ранее (табл. 2), в конце ферментации оставалось значительное количество сахара (табл. 3). Цитрат, по-видимому, усиливал ферментацию, особенно в присутствии глюкозы, тогда как пируват значительно замедлял ферментацию обоих сахаров. Наконец, S. cerevisiae 56101 достаточно эффективно ферментировал оба сахара только в отсутствие пирувата или цитрата. Пируват задерживает брожение, тогда как цитрат вообще подавляет рост дрожжей.Последний эффект был подтвержден испытанием, в котором анализировались концентрации клеток и метаболиты (рис. 3): в присутствии цитрата S. cerevisiae 56101 не росли (количество клеток оставалось или уменьшалось немного ниже числа ок. 10). 6 КОЕ/мл при инокуляции) и не продуцировал никаких метаболитов. Чен и др. (2010) показали, что добавление в среду для выращивания S. cerevisiae 1 г цитрата натрия на литр приводило к подавлению активности фосфофруктокиназы во время ферментации.Однако более высокие концентрации могут привести к подкислению цитозоля дрожжей и могут быть ответственны за ингибирование роста. Пируват, с другой стороны, эффективно поглощается S. cerevisiae цитоплазмой (Akita et al., 2000), где он может участвовать в углеводном и энергетическом метаболизме (Flores et al., 2000). Было показано, что внутриклеточное накопление пирувата приводит к одновременному образованию этанола и ацетата (Van Urk et al., 1990; van Dijken et al., 1993). Производство глицерина является одним из путей регенерации НАД + и происходит в основном при образовании НАДН в реакциях, отличных от гликолиза (Flores et al., 2000). Повышенная изменчивость метаболитов при добавлении пирувата соответствует предыдущим наблюдениям (Zelle et al., 2008).

Таблица 3. Концентрация остаточного сахара в конце брожения (37°С, 24 ч) тестируемыми микроорганизмами .

Рис. 3. Профили метаболитов и колониеобразующих единиц (КОЕ) микроорганизмов, выращенных в анаэробных условиях в среде МСВ при 37°С с различными добавками: Glu, глюкоза; Фру, фруктоза; Цитрат, цитрат; Пир, пируват . (А) L. fermentum 92294; (B) W. confusa NRRL-B-14171; (К) S. cerevisiae 56101.

Анализы метаболитов, продуцируемых L. fermentum 92294 и W. confusa NRRL-B-14171 (рис. 3), показали, что добавление цитрата и пирувата значительно повлияло на количество и профили метаболитов. L. fermentum 92294 продуцировал в основном лактат и этанол при выращивании на глюкозе, но продуцировал лактат, эритрит и ацетат примерно в эквимолярных концентрациях ок.50–70 мМ за счет этанола при выращивании на глюкозе с цитратом. Концентрация этанола была снижена с ок. 70 мМ до < 10 мМ (рис. 3). При добавлении пирувата в дополнение к глюкозе преобладающим образующимся метаболитом был лактат. Его концентрация была почти вдвое выше, чем в присутствии одной глюкозы. Ацетат увеличился с ок. от 5 до 25 мМ, тогда как содержание этанола уменьшилось с ок. от 70 до 20 мМ. Ацетальдегид четко определялся, но в небольшом количестве. При применении фруктозы в качестве источника углерода для л.fermentum 92294 значительная часть фруктозы сразу восстанавливалась до маннита. Добавление цитрата привело к уменьшению количества маннита и увеличению количества лактата, эритрита, ацетата и этанола, при этом эритрит стал доминирующим метаболитом (рис. 3). При добавлении пирувата в дополнение к фруктозе наиболее важным изменением метаболитов было увеличение лактата. В этих условиях эритрит не образовывался, а этанол производился лишь в небольших количествах. Снова было замечено небольшое, но четко определяемое количество ацетальдегида.

Когда для ферментации применяли W. confusa NRRL-B-14171, не наблюдалось различий в профилях метаболитов при росте на глюкозе и фруктозе соответственно. Лактат и этанол были получены в почти эквимолярных количествах ок. Было обнаружено 45 мкмоль/мл и лишь незначительное количество ацетата (<5 мкмоль/мл) (рис. 3). Добавление цитрата приводило к увеличению образования лактата (90–100 мкмоль/мл), а также ацетата (около 75 и 40 мкмоль/мл) из глюкозы и фруктозы, в то время как снижение, но все же значительное производство этанола наблюдалось из обоих сахаров ( 20 и 25 мкмоль/мл из глюкозы и фруктозы соответственно).Когда вместо цитрата добавляли пируват, производство этанола дополнительно снижалось до концентраций < 5 мМ, и были обнаружены небольшие концентрации ацетальдегида от 5 до 10 мМ. Лактат и ацетат были преобладающими метаболитами.

Эти результаты подтверждают данные Zaunmüller et al. (2006), которые показали, что гетероферментативные молочнокислые бактерии могут использовать фруктозу, цитрат и пируват в качестве внешних акцепторов электронов для регенерации НАД(Ф)Н, тем самым обходя регенерацию НАД(Ф)Н путем производства этанола, что, по-видимому, является ограничивающим фактором. этап ферментации гексозы.Цитрат содержится в высоких концентрациях в цитрусовых (до 260 мМ; Penniston et al., 2008) и в довольно низких концентрациях в молоке (около 8 мМ; Linzell et al., 1976). Он находит множество применений в пищевой промышленности, где используется, например, в качестве подкислителя во многих различных пищевых продуктах (Stratford, 1999) или в качестве эмульгатора при производстве плавленого сыра (Zehren and Nusbaum, 2000). Пируват присутствует в высоких концентрациях в красных яблоках (около 450 мг на красное яблоко среднего размера; https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Pyruvic_acid#section=Drug-and-Medication-Information) и может использоваться в качестве антиоксиданта, поглотителя свободных радикалов, противовоспалительного средства и предшественника для биосинтеза аминокислот, таких как триптофан и аланин (Li et al., 2001). ; Venkataraman et al., 2002; Aarnikunnas et al., 2003; Song et al., 2004).

Модуляция ферментации фруктозы в фекальных суспензиях путем добавления определенных микроорганизмов

Для изучения in vitro влияния на фекальную микробиоту специфических микроорганизмов и пищевых акцепторов электронов из образцов фекалий готовили суспензии.В качестве источника углерода для ферментации добавляли фруктозу. Образцы фекалий были получены от четырех здоровых мужчин-добровольцев с избыточным весом. Свежие образцы были исследованы на некоторые основные микробные группы: полные анаэробы, Enterobacteriaceae , лактобациллы и клостридии. Общее количество анаэробов существенно различалось между образцами более чем на два порядка (табл. 4). Лактобактерии составляли от 0,01 до 10% от общего числа анаэробов. Численность клостридий достигала лишь 10% от численности лактобацилл. Enterobacteriaceae присутствовали в наименьшем количестве, достигая всего от 0,01 до 1% лактобацилл.

Таблица 4. Микробиологический анализ свежих образцов фекалий, взятых у четырех добровольцев с избыточным весом .

Обоснование исследования суспензий, приготовленных из образцов фекалий, метаболиты которых были получены из фруктозы, было основано на предполагаемой роли фруктозы в развитии НАЖБП (Machado and Cortez-Pinto, 2012).Увеличение потребления фруктозы в последние годы считается фактором риска НАЖБП (Ouyang et al., 2008), а ее метаболизм, по-видимому, усиливает синтез триглицеридов, что приводит к липогенезу de novo (Lim et al., 2010). Все микроорганизмы, выбранные для добавления в суспензии, принадлежали к типу Firmicutes , количество которых, как было показано, увеличилось в микробиоте кишечника людей с ожирением (Turnbaugh et al., 2006): A. caccae DSM 14662 . в качестве контроля, не производящего этанол, и л.acidophilus NRRL B-4495, L. fermentum 92294 и W. confusa NRRL-B-14171, представляющие собой гомоферментативные, гетероферментативные mdh -экспрессирующие и гетероферментативные не- mdh 900 молочнокислых бактерий соответственно. Кроме того, в качестве пищевых акцепторов электронов и неомицина были добавлены цитрат и пируват для контроля образования метаболитов, зависящих от микробиоты.

Таблица 5 показывает, что из проанализированных метаболитов (лактат, ацетат, пропионат, бутират, маннит, этанол) в фекальных суспензиях маннит был обнаружен в самых высоких концентрациях ок.11 мг/мл, затем лактат (около 5 мг/мл) и ацетат (около 1,6 мг/мл). Этанол был обнаружен во всех четырех суспензиях со средней концентрацией ок. 1 мг/мл. Пропионат постоянно обнаруживался в низких концентрациях ок. 0,7 мг/мл, тогда как бутират был обнаружен только в одной взвеси в концентрации 0,6 мг/мл. Поскольку активность маннитдегидрогеназы в основном обнаружена у молочнокислых бактерий, дрожжей и грибов (Saha and Racine, 2011), высокая распространенность маннита и лактата, по-видимому, указывает на большое количество молочнокислых бактерий, проявляющих активность маннитолдегидрогеназы.Добавление неомицина значительно снижало производство маннита, этанола, пропионата, бутирата и ацетата. При этом выработка лактата никак не пострадала. Возможным объяснением может быть то, что из-за ингибирования молочнокислых бактерий, экспрессирующих маннитолдегидрогеназу, нечувствительные к неомицину бактерии, продуцирующие молочную кислоту, такие как, например, бифидобактерии, не экспрессирующие маннитолдегидрогеназу, могут взять на себя ферментацию. Хотя неомицин активен в отношении грамотрицательных и грамположительных бактерий, нечувствительность к этому антибиотику обнаружена у некоторых молочнокислых бактерий и, в частности, у бифидобактерий (D’Aimmo et al., 2007; Ашраф и Шах, 2011 г.; Абриоуэль и др., 2015).

Таблица 5. Метаболиты, образующиеся из фруктозы при различных обработках фекальных суспензий .

Добавление A. caccae DSM 14662 приводило к подавлению образования пропионата, маннита и этанола, аналогично наблюдаемому при добавлении неомицина. Лактат был даже выше, а ацетат несколько менее подавлен по сравнению с неомицином. Однако производство бутирата было значительно выше, чем при использовании необработанных суспензий.Последнее согласуется с метаболизмом A. caccae , который, как известно, производит в основном бутират из гексоз (Schwiertz et al., 2002; Duncan et al., 2004). По-видимому, добавление в суспензии сравнительно больших количеств A. caccae DSM 14662 привело к подавлению многих бактерий, участвующих в продукции метаболитов в необработанных суспензиях.

Когда к суспензиям добавляли L. acidophilus NRRL B-4495, наиболее выраженный эффект по сравнению с необработанными суспензиями наблюдался для маннита: производство снижалось до ок.1,5 мг/мл. Этанол и бутират не были обнаружены, пропионат был несколько снижен, а уровни лактата и ацетата остались неизменными. Это указывает на то, что добавление больших количеств этой гомомолочнокислой бактерии в значительной степени подавляло гетеромолочнокислые бактерии, продуцирующие маннит, в суспензиях.

При добавлении L. fermentum 92294, гетеромолочнокислых молочнокислых бактерий, продуцирующих маннит, уровень маннита оставался в основном таким же, как и в необработанных суспензиях. Удивительно, но производство лактата было снижено до ок.половина этого количества в необработанных суспензиях. Это отличается от ферментации в среде MCB, где маннит и лактат были произведены прибл. в равных количествах (рис. 3А). Однако это согласуется с более ранними наблюдениями о том, что при различных условиях роста маннит и другие метаболиты образуются в различных пропорциях (Wisselink et al., 2002). Кроме того, необходимо учитывать, что в суспензионной системе происходит коферментация, поэтому метаболиты, продуцируемые одними организмами, могут метаболизироваться другими.

Добавление W. confusa NRRL-B-14171 показало одно заметное изменение по сравнению с необработанными суспензиями, т. е. производство спирта значительно ( P < 0,05) увеличилось в 3–4 раза. Этот эффект был подтвержден измерением активности алкогольдегидрогеназы (АДГ) в суспензиях, обработанных по-разному (рис. 4). Добавление W. confusa NRRL-B-14171 вызывало повышение активности АДГ, которое значительно ( P <0,05) отличалось от всех других обработок.Наконец, добавление цитрата и пирувата, соответственно, подавляло выработку этанола и маннита, одновременно стимулируя выработку лактата и ацетата. Пируват как прямой акцептор электронов для NADH значительно стимулировал выработку лактата, тогда как цитрат в качестве молекулы-предшественника ацетил-КоА продемонстрировал значительное увеличение выработки ацетата помимо увеличения выработки лактата. Эти данные, по-видимому, указывают на то, что оба пищевых акцептора электронов благоприятно воздействуют в основном на гетеромолочнокислые бактерии, не продуцирующие маннит, проживающие в микробиоте взвесей.

Рис. 4. Активность микробной алкогольдегидрогеназы (АДГ, мЕд/мл) фекальных взвесей, обработанных различными способами, после 24-часовой инкубации при 37°C в МХБ, содержащем фруктозу . Показан график прямоугольников и усов, где медиана обозначена границей черного и серого прямоугольников, а усы указывают максимальные и минимальные значения. Суспензия без добавления бактериального штамма; Ac, A. caccae DSM 14662; La, L. acidophilus NRRL-B-4495; Lf, L. fermentum 92294; сан.узел, Вт.путаница NRRL-B-14171. Различные буквы (a и b) указывают на значительные различия ( P <0,05) в апостериорном тесте Tuckey.

Выводы

Наши данные показывают, что значительные количества этанола были произведены in vitro из глюкозы и фруктозы L. fermentum 92294, W. confusa NRRL-B-14171 и S. cerevisiae 56101. в подавлении продукции этанола из глюкозы и фруктозы во всех трех организмах, тогда как цитрат был эффективен только в л.fermentum 92294 и W. confusa NRRL-B-14171. В S. cerevisiae добавление цитрата приводило к ингибированию роста. В ферментирующие фруктозу фекальные суспензии, приготовленные из образцов фекалий четырех здоровых добровольцев с ожирением, добавлены A. caccae DSM 14662, L. acidophilus NRRL B-4495, L. fermentum 92294, цитрат и пируват соответственно. привело к подавлению производства этанола. С другой стороны, добавление W. confusa NRRL-B-14171 приводило к увеличению производства этанола.Наши результаты показывают, что в условиях in vitro глюкоза и фруктоза были сахарами, дающими наибольшее количество этанола. Испытываемые дисахариды и полисахарид не давали сравнимых количеств этанола, хотя почти полностью состояли из фруктозы (инулин), фруктозы и галактозы (лактулоза) или глюкозы и галактозы (лактоза). В корреляции с результатами по диетическим акцепторам электронов эти данные показывают, что при выборе диеты производство этанола в кишечнике может быть подавлено.Это согласуется с концепцией пребиотиков, которые представляют собой сахара или полисахариды, метаболизируемые не хозяином, а частью микробиоты кишечника, благодаря чему оказывается положительное влияние на здоровье хозяина. Мы думаем, что наши эксперименты с фекальными суспензиями дали два интересных результата. (i) Все четыре суспензии, приготовленные из образцов фекалий здоровых взрослых с избыточным весом, выделяли значительное количество этанола из фруктозы. Это может указывать на то, что действительно образ жизни, приводящий к ожирению, может проложить путь к НАЖБП из-за дисбаланса микробиоты, вырабатывающей этанол.Мы должны иметь в виду, что мы проанализировали только четыре разных образца фекалий и что мы не включали контрольные образцы субъектов с нормальным весом. Тем не менее, мы можем принять эти результаты в качестве отправной точки для дальнейших экспериментов на более широкой основе, с большим количеством добровольцев и соответствующим контролем. (ii) W. confusa NRRL-B-14171 был единственным из протестированных микроорганизмов, который вызывал повышенное производство этанола. Мы не думаем, что действительно W. confusa является единственным «плохим микробом», ответственным за индукцию НАЖБП: для такого вывода наши данные основаны на слишком небольшом количестве микроорганизмов.Тем не менее, мы считаем, что микроорганизмы с аналогичным метаболизмом, например, с гетеромолочнокислым ферментативным метаболизмом, не продуцирующим маннит, могут быть вовлечены в развитие НАЖБП за счет непрерывного производства этанола в кишечнике. W. confusa принадлежит к Firmicutes , которые, как было показано, связаны с НАЖБП. Мы проверили нашу гипотезу, скармливая W. confusa NRRL-B-14171 крысам Wistar в дополнение к диете с высоким содержанием жиров и фруктозы. Данные описаны в сопроводительной рукописи, представленной в ту же тему исследования границ в микробиологии.

Вклад авторов

FE: концепция, сбор, анализ и интерпретация данных для работы. WB: концепция, анализ и интерпретация данных для работы. DM: анализ и интерпретация данных для работы. Md: анализ и интерпретация данных для работы. HW: анализ и интерпретация данных для работы. JS: концепция, дизайн, интерпретация данных для работы. КХ: концепция, дизайн, интерпретация данных для работы.

Заявление о конфликте интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Благодарности

Это исследование было проведено при финансовой поддержке Немецкой службы академических обменов (программа DAAD-GERLS). Нильс Рёш, Вера Майнерс и Микаэла Штайнке выражают благодарность за их квалифицированную техническую помощь. Проф. д-р Майкл Блаут и Северная региональная исследовательская лаборатория (NRRL) выражают благодарность за предоставление нам некоторых кишечных бактериальных штаммов.

Ссылки

Арникуннас, Дж., фон Веймарн, Н., Рёнхольм, К., Лейсола, М., и Палва, А. (2003). Метаболическая инженерия Lactobacillus fermentum для производства маннита и чистой L-молочной кислоты или пирувата. Биотехнология. биоинж. 82, 653–663. дои: 10.1002/бит.10615

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Абриуэль, Х., дель Кармен Касадо Муньос, М., Лерма, Л.Л., Перес Монторо, Б., Бокельманн, В., Пичнер, В., и др. (2015). Новое понимание устойчивости к антибиотикам видов Lactobacillus из ферментированных пищевых продуктов. Пищевая рез. Междунар. 78, 465–481. doi: 10.1016/j.foodres.2015.09.016

CrossRef Full TextGoogle Scholar

Акита, О., Нисимори, К., Симамото, Т., Фудзи, Т. и Иефудзи, Х. (2000). Транспорт пирувата в Saccharomyces cerevisiae и клонирование гена, кодирующего пируватпермеазу. Бионауч. Биотехнолог. Биохим . 64, 980–984. doi: 10.1271/bbb.64.980

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Амаретти, А., Бернарди Т., Тамбурини Э., Занони С., Ломма М., Маттеуцци Д. и соавт. (2007). Кинетика и метаболизм Bifidobacterium Teenis MB 239, растущих на глюкозе, галактозе, лактозе и галактоолигосахаридах. Заяв. Окружающая среда. Микробиол . 73, 3637–3644. doi: 10.1128/AEM.02914-06

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Армугом Ф., Генри М., Виалеттес Б., Ракка Д. и Рауль Д. (2009). Мониторинг бактериального сообщества микробиоты кишечника человека выявляет увеличение Lactobacillus у пациентов с ожирением и метаногенов у пациентов с анорексией. PLoS ONE 4:e7125. doi: 10.1371/journal.pone.0007125

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ашраф Р. и Шах Н. П. (2011). Селективный и дифференциальный подсчет Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus, Streptococcus thermophilus, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus casei и Bifidobacterium spp. в йогурте-обзор. Междунар. Дж. Пищевая микробиология. 149, 194–208. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2011.07.008

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Бейкер, С.С., Бейкер Р. Д., Лю В., Новак Н. Дж. и Чжу Л. (2010). Роль метаболизма алкоголя при неалкогольном стеатогепатите. PLoS ONE 5:e9570. doi: 10.1371/journal.pone.0009570

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Bellentani, S., Tiribelli, C., Saccoccio, G., Sodde, M., Fratti, N., De Martin, C., et al. (1994). Распространенность хронического заболевания печени среди населения северной Италии в целом: исследование Dionysos. Гепатология 20, 1442–1449.

Реферат PubMed | Академия Google

Бергхейм И., Вебер С., Вос М., Кремер С., Волынец В., Касероуни С. и др. (2008). Антибиотики защищают от вызванного фруктозой накопления липидов в печени у мышей: роль эндотоксина. Дж. Гепатол . 48, 983–992. doi: 10.1016/j.jhep.2008.01.035

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Бергман, Э. Н. (1990). Энергетический вклад летучих жирных кислот из желудочно-кишечного тракта у различных видов. Физиол. Ред. 70, 567–590.

Реферат PubMed | Академия Google

Бёк, А., и Соерс, Г. (1996). «Ферментация», в Escherichia coli и Salmonella typhimurium: Cellular and Molecular Biology, 2nd Edn. , редакторы Ф.С. Нейдхардт, Р. Кертисс III, Дж. Л. Ингрэм, Э.К.С. Лин, К. Брукс Лоу, Б. Магасаник, Б. Резникофф, М. Райли, М. Шехтер и Х.Э. Амбаргер (Вашингтон, округ Колумбия: ASM Press), 262–282.

Бакел, В. (1999). «Анаэробный энергетический метаболизм», в Biology of the Prokaryotes , eds J.В. Ленгелер, Г. Древс и Х. Г. Шлегель (Штутгарт: Георг Тиме Верлаг), 278–326.

Cani, P.D., Neyrinck, A.M., Fava, F., Knauf, C., Burcelin, R.G., Tuohy, K.M., et al. (2007). Селективное увеличение количества бифидобактерий в микрофлоре кишечника улучшает диабет, вызванный диетой с высоким содержанием жиров, у мышей посредством механизма, связанного с эндотоксемией. Диабетология 50, 2374–2383. doi: 10.1007/s00125-007-0791-0

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Чен Ю., Ли С., Сюн Дж., Ли З., Бай Дж., Чжан Л. и др. (2010). Механизмы действия цитрата на регулирование распределения потока углерода при биосинтезе уридин-5′-монофосфата Saccharomyces cerevisiae . Заяв. микробиол. Биотехнолог . 86, 75–81. doi: 10.1007/s00253-009-2287-y

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Читтури, С., Фаррелл, Г.К., и Джордж, Дж. (2004). Неалкогольный стеатогепатит в Азиатско-Тихоокеанском регионе: шок будущего. Дж. Гастроэнтерол. Гепатол . 19, 368–374. doi: 10.1111/j.1440-1746.2003.03252.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Кларк, Дж. М., Бранкати, Ф. Л., и Диль, А. М. (2002). Неалкогольная жировая болезнь печени. Гастроэнтерология 122, 1649–1657. doi: 10.1053/gast.2002.33573

Реферат PubMed | Полнотекстовая перекрестная ссылка

Коллинз, доктор медицинских наук, Самелис, Дж., Метаксопулос, Дж., и Уоллбэнкс, С. (1993). Таксономические исследования некоторых leuconostoc-подобных организмов из ферментированных колбас: описание нового рода Weissella для группы видов Leuconostoc paramesenteroides. J. Appl. Бактериол . 75, 595–603. doi: 10.1111/j.1365-2672.1993.tb01600.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Коуп, К., Рисби, Т., и Дил, А.М. (2000). Увеличение производства этанола в желудочно-кишечном тракте у мышей с ожирением: значение для патогенеза жировой болезни печени. Гастроэнтерология 119, 1340–1347. doi: 10.1053/gast.2000.19267

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Д’Эммо, М.Р., Модесто М. и Биавати Б. (2007). Антибиотикорезистентность молочнокислых бактерий и Bifidobacterium spp. выделены из молочных и фармацевтических продуктов. Междунар. Дж. Еда. микробиол. 115, 35–42. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2006.10.003

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Дегнан, Б.А., и Макфарлейн, Г.Т. (1995). Характер использования углеводов и предпочтение субстрата у Bacteroides thetaiotaomicron . Анаэроб 1, 25–33.дои: 10.1016/S1075-9964(95)80392-0

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Де Ман, Дж. Д., Рогоза, М., и Шарп, М. Е. (1960). Среда для культивирования Lactobacilli . J. Appl. микробиол. 23, 130–135. doi: 10.1111/j.1365-2672.1960.tb00188.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Дуар, В., и Феррарис, Р. П. (2008). Регуляция переносчика фруктозы GLUT5 в норме и при патологии. утра.Дж. Физиол. Эндокринол. Метаб . 295, Е227–Е237. doi: 10.1152/ajpendo..2008

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Дюбуа, М., Жиль, К.А., Гамильтон, Дж.К., Реберс, П.А., и Смит, Ф. (1956). Колориметрический метод определения сахаров и родственных им веществ. Анал. Химия . 28, 350–356. дои: 10.1021/ac60111a017

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Дункан, С. Х., Луи, П., и Флинт, Х. Дж. (2004).Бактерии, утилизирующие лактат, выделены из фекалий человека и производят бутират в качестве основного продукта ферментации. Заяв. Окружающая среда. Микробиол . 70, 5810–5817. doi: 10.1128/AEM.70.10.5810-5817.2004

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Eaton, A.D., Clesceri, L.S., and Greenberg, A.E. (1995). Стандартные методы исследования воды и сточных вод, 19-е изд. Вашингтон, округ Колумбия: Американская ассоциация общественного здравоохранения.

Эгерт, М., де Грааф, А.А., Смидт, Х., де Вос, В.М., и Венема, К. (2006). За пределами разнообразия: функциональная микробиомика толстой кишки человека. Тренды Миробиол . 14, 86–91. doi: 10.1016/j.tim.2005.12.007

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Фалони Г., Вершерен А., Де Брюйкер Ф., Де Претер В., Вербеке К., Лерой Ф. и др. (2009). In vitro Кинетика ферментации пребиотического фруктана инулинового типа бактериями толстой кишки, продуцирующими бутират: внедрение газовой хроматографии в режиме онлайн для количественного анализа образования углекислого газа и газообразного водорода. Заяв. Окружающая среда. Микробиол . 75, 5884–5892. doi: 10.1128/AEM.00876-09

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Фань, Дж. Г., Сюй, З. Дж., и Ван, Г. Л. (2005). Влияние лактулозы на создание модели безалкогольного стеатогептита у крыс. World J. Gastroenterol . 11, 5053–5056. дои: 10.3748/wjg.v11.i32.5053

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Флорес, К.Л., Родригес, К., Пети, Т.и Ганседо, К. (2000). Углеводный и энергетический обмен у нетрадиционных дрожжей. FEMS микробиол. Ред. 24, 507–524. doi: 10.1111/j.1574-6976.2000.tb00553.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Френкель, Д.Г. (1996). «Гликолиз», в Escherichia coli и Salmonella typhimurium: Cellular and Molecular Biology, 2nd Edn. , редакторы Ф. К. Нейдхардт, Р. Кертисс III, Дж. Л. Ингрэм, Э. К. С. Лин, К. Брукс Лоу, Б. Магасаник, Б.Резникофф, М. Райли, М. Шехтер и Х. Э. Амбаргер (Вашингтон, округ Колумбия: ASM Press), 189–198.

Галлоуэй, Л. Д., и Берджесс, Р. (1952). Прикладная микология и бактериология, 3-е изд. Лондон: Леонард Хилл.

Gill, S.R., Pop, M., Deboy, R.T., Eckburg, P.B., Turnbaugh, P.J., Samuel, B.S., et al. (2006). Метагеномный анализ микробиома дистального отдела кишечника человека. Наука 312, 1355–1359. doi: 10.1126/наука.1124234

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Гросс, Л.С., Ли, Л., Форд, Э.С., и Лю, С. (2004). Повышенное потребление рафинированных углеводов и эпидемия диабета 2 типа в США: экологическая оценка. утра. Дж. Клин. Нутр. 79, 774–779.

Реферат PubMed | Академия Google

Харлан Н.П., Кемпкер Р.Р., Парех С.М., Бурд Э.М. и Кухар Д.Т. (2011). Бактериемия Weissella confusa у пациента после трансплантации печени с тромбозом печеночной артерии. Транспл. Заразить. Дис . 13, 290–293.doi: 10.1111/j.1399-3062.2010.00579.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Хартеминк, Р., Доменек, В. Р., и Ромбаутс, Ф. М. (1997). ЛАМВАБ-Новая селективная среда для выделения лактобацилл из фекалий. J. Microbiol. Методы 29, 77–84. дои: 10.1016/S0167-7012(97)00025-0

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хёверстад, Т., и Мидтведт, Т. (1986). Короткоцепочечные жирные кислоты у стерильных мышей и крыс. Дж.Нутр. 116, 1772–1776 гг.

Реферат PubMed | Академия Google

Джонс, Х.Ф., Батлер, Р.Н., и Брукс, Д.А. (2011). Кишечный транспорт фруктозы и мальабсорбция у человека. утра. Дж. Физиол. Гастроинтест. Физиол печени . 300, Г202–Г206. doi: 10.1152/jpgi.00457.2010

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Котарский С.Ф. и Сальерс А.А. (1981). Влияние длительного времени генерации на рост Bacteroides thetaiotaomicron в непрерывной культуре, индуцированной углеводами. J. Бактериол. 146, 853–860.

Реферат PubMed | Академия Google

Либуда, Л., Алекси, У., Зихерт-Хеллерт, В., Штеле, П., Караолис-Данкерт, Н., Байкен, А.Е., и соавт. (2008). Модель потребления напитков и долгосрочная связь с массой тела у немецких подростков — результаты исследования DONALD. руб. Дж. Нутр. 99, 1370–1379. дои: 10.1017/S0007114507862362

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Лим, Дж.С., Миетус-Снайдер, М., Валенте, А., Шварц, Дж. М., и Люстиг, Р. Х. (2010). Роль фруктозы в патогенезе НАЖБП и метаболического синдрома. Нац. Преподобный Гастроэнтерол. Гепатол . 7, 251–264. doi: 10.1038/nrgastro.2010.41

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Мачадо, М., и Кортес-Пинто, Х. (2012). Микробиота кишечника и неалкогольная жировая болезнь печени. Энн. Гепатол. 4, 440–449.

Реферат PubMed | Академия Google

Майкас, С., Феррер С. и Пардо И. (2002). Регенерация NAD(P)H является ключом к гетеролактической ферментации гексоз в Oenococcusoeni. Микробиология 148, 325–332. дои: 10.1099/00221287-148-1-325

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Марголлес, А., и Санчес, Б. (2012). Отбор Bifidobacterium animalis subsp. lactis со сниженной способностью продуцировать уксусную кислоту. Заяв. Окружающая среда. Микробиол . 78, 3338–3342.doi: 10.1128/AEM.00129-12

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Масуко Т., Минами А., Ивасаки Н., Мадзима Т., Нисимура С. и Ли Ю. К. (2005). Анализ углеводов методом фенол-серной кислоты в формате микропланшета. Анал. Биохим . 339, 69–72. doi: 10.1016/j.ab.2004.12.001

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Миллион, М., Маранинчи, М., Генри, М., Армугом, Ф., Рише, Х., Каррьери, П., и другие. (2012). Связанная с ожирением микробиота кишечника обогащена Lactobacillus reuteri и обеднена Bifidobacterium animalis и Methanobrevibacter smithii . Междунар. J. Ожирение 36, 817–825. doi: 10.1038/ijo.2011.153

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ouyang, X., Cirillo, P., Sautin, Y., McCall, S., Bruchette, J.L., Diehl, A.M., et al. (2008). Потребление фруктозы как фактор риска неалкогольной жировой болезни печени. Дж. Гепатол . 48, 993–999. doi: 10.1016/j.jhep.2008.02.011

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Пеннистон, К.Л., Накада, С.Ю., Холмс, Р.П., и Ассимос, Д.Г. (2008). Количественная оценка лимонной кислоты в лимонном соке, соке лайма и имеющихся в продаже продуктах из фруктовых соков. Дж. Эндоурол . 22, 567–570. doi: 10.1089/end.2007.0304

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Пот, Б.и Цакалиду, Э. (2009). «Таксономия и метаболизм Lactobacillus», в Lactobacillus Molecular Biology: From Genomics to Probiotics , eds A Ljungh and T. Wadström (Норфолк, Великобритания: Caister Academic Press), 2–58.

Академия Google

Schwiertz, A., Hold, G.L., Duncan, S.H., Gruhl, B., Collins, MD, Lawson, P.A., et al. (2002). Anaerostipes caccae род. ноябрь, сп. nov., новая сахаролитическая, утилизирующая ацетат и продуцирующая бутират бактерия из человеческих фекалий. Сист. заявл. Микробиол . 25, 46–51. дои: 10.1078/0723-2020-00096

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Solga, S., Alkhuraishe, A.R., Clark, J.M., Torbenson, M., Greenwald, A., Diehl, A.M., et al. (2004). Диетический состав и неалкогольная жировая болезнь печени. Коп. Дис. Наука . 49, 1578–1583. doi: 10.1023/B:DDAS.0000043367.69470.b7

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Солга, С.Ф. и Диль, А.М. (2003). Неалкогольная жировая болезнь печени: взаимодействие просвета печени и возможная роль пробиотиков. J. Гепатол. 38, 681–687. doi: 10.1016/S0168-8278(03)00097-7

Реферат PubMed | Полнотекстовая перекрестная ссылка

Сонг М., Келлум Дж. А., Калдас Х. и Финк М. П. (2004). Доказательства того, что истощение глутатиона является механизмом, ответственным за противовоспалительное действие этилпирувата в культивируемых липополисахарид-стимулированных клетках RAW 264.7. Дж.Фармакол. Эксп. . 308, 307–316. doi: 10.1124/jpet.103.056622

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Стратфорд, М. (1999). «Слабокислотное и «слабокислотное предохраняющее» ингибирование дрожжей», в Food Microbiology and Food Safety in the Next Millennium , eds ACJ Tuijtelaars, RA Samson, FM Rombouts, S. Notermans (Veldhoven: Foundation Food Micro 99), 315 –319.

Сугатани Дж., Садамицу С., Вада Т., Ямазаки Ю., Икари, А., и Мива, М. (2012). Влияние диетического инулина, статина и их совместного лечения на гиперлипидемию, стеатоз печени и изменения в ферментах, метаболизирующих лекарственные средства, у крыс, получавших диету с высоким содержанием жиров и сахарозы. Нутр. Метаб. 9, 23–35. дои: 10.1186/1743-7075-9-23

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Тамиме, А. Ю. (2002). «Микробиология заквасок», в Справочник по микробиологии молочной продукции, 3-е изд. , изд. Р. К. Робинсон (Нью-Йорк, штат Нью-Йорк: Wiley Interscience and Sons), 261–366.

Terzaghi, BE, and Sandine, WE (1975). Улучшенная среда для молочнокислых стрептококков и их бактериофагов. Заяв. Микробиол . 29, 807–813.

Реферат PubMed | Академия Google

Тернбо, П.Дж., Лей, Р.Е., Маховальд, М.А., Магрини, В., Мардис, Э.Р., и Гордон, Дж.И. (2006). Микробиом кишечника, связанный с ожирением, с повышенной способностью собирать энергию. Природа 444, 1027–1031. doi: 10.1038/nature05414

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ван дер Меулен, Р., Adriany, T., Verbrugghe, K., and De Vuyst, L. (2006b). Кинетический анализ метаболизма бифидобактерий показывает незначительную роль янтарной кислоты в регенерации НАД за счет его связанной с ростом продукции. Заяв. Окружающая среда. Микробиол . 72, 5204–5210. doi: 10.1128/AEM.00146-06

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ван дер Меулен, Р., Макрас, Л., Вербрюгге, К., Адриани, Т., и Де Вюйст, Л. (2006a). In vitro кинетический анализ потребления олигофруктозы Bacteroides и Bifidobacterium spp.указывает на различные механизмы деградации. Заяв. Окружающая среда. Микробиол . 72, 1006–1012. doi: 10.1128/AEM.72.2.1006-1012.2006

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Van Urk, H., Voll, W.S.L., Scheffers, W.A., и van Dijken, J.P. (1990). Анализ переходного состояния метаболических потоков у Crabtree-положительных и Crabtree-отрицательных дрожжей. Заяв. Окружающая среда. микробиол. 56, 281–287.

Реферат PubMed | Академия Google

Венкатараман, Р., Келлум, Дж. А., Сонг, М., и Финк, М. П. (2002). Реанимация раствором Рингера в этилпирувате продлевает выживаемость и модулирует концентрацию цитокинов в плазме и концентрации нитритов/нитратов в крысиной модели шока, вызванного липополисахаридами. Шок 18, 507–512. дои: 10.1097/00024382-200212000-00004

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ванлесс, И. Р., и Ленц, Дж. С. (1990). Жировой гепатит печени (стеатогепатит) и ожирение: патологоанатомическое исследование с анализом факторов риска. Гепатология 12, 1106–1110. doi: 10.1002/hep.1840120505

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Уилкинс, Т. Д., и Чалгрен, С. (1976). Среда для тестирования анаэробных бактерий на чувствительность к антибиотикам. Антимикроб. Агенты Чемотер . 10, 926–928. doi: 10.1128/AAC.10.6.926

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Wisselink, H.W., Weusthuis, R.A., Eggink, G., Hugenholtz, J., and Grobben, G.Дж. (2002). Продукция маннита молочнокислыми бактериями: обзор. Междунар. Молочная J . 12, 151–161. doi: 10.1016/S0958-6946(01)00153-4

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Востманн, Б.С., Ларкин, К., Мориарти, А., и Брукнер-Кардосс, Э. (1983). Энергетический метаболизм поступления с пищей и экскреторные потери взрослых самцов бесмикробных крыс Wister. Лаб. Аним. науч. 33, 46–50.

Реферат PubMed | Академия Google

Заунмюллер, Т., Айхерт, М., Рихтер, Х., и Унден, Г. (2006). Изменения энергетического метаболизма биотехнологически значимых гетероферментативных молочнокислых бактерий при росте на сахарах и органических кислотах. Заяв. микробиол. Биотехнолог . 72, 421–429. doi: 10.1007/s00253-006-0514-3

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Зерен, В.Л., и Нусбаум, Д. (2000). Плавленый сыр, 2-е издание . Мэдисон, Висконсин: Издательство Cheese Reporter Publishing Company.

Целле, Р.M., de Hulster, E., van Winden, W.A., de Waard, P., Dijkema, C., Winkler, A.A., et al. (2008). Производство яблочной кислоты Saccharomyces cerevisiae : технология карбоксилирования пирувата, восстановление оксалоацетата и экспорт малата. Заяв. Окружающая среда. Микробиол . 74, 2766–2777. doi: 10.1128/AEM.02591-07

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Произошла ошибка при настройке пользовательского файла cookie

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности.Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.


Настройка браузера на прием файлов cookie

Существует множество причин, по которым файл cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее распространенные причины:

  • В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки браузера, чтобы принять файлы cookie, или спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
  • Ваш браузер спрашивает, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались.Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файл cookie.
  • Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Попробуйте другой браузер, если вы подозреваете это.
  • Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы это исправить, установите правильное время и дату на своем компьютере.
  • Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie.Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Предоставить доступ без файлов cookie потребует от сайта создания нового сеанса для каждой посещаемой вами страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.


Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в файле cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файле cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, если вы не решите ввести его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступ к остальной части вашего компьютера, и только сайт, создавший файл cookie, может его прочитать.

Кратко о FDA: FDA отзывает временные рекомендации для дезинфицирующих средств для рук на спиртовой основе

Для немедленного выпуска:

Следующая цитата приписывается Патриции Каваццони, М.Д., директор Центра оценки и исследований лекарственных средств FDA:

Испанский

«FDA стремится предоставлять своевременные рекомендации для поддержки непрерывности и реагирования во время пандемии COVID-19. На протяжении всей пандемии агентство постоянно оценивало потребности и обстоятельства, связанные с дезинфицирующим средством для рук, и выпускало временные руководства, чтобы обеспечить гибкость регулирования для определенных фирм, чтобы помочь удовлетворить возросший спрос.

По мере развития соответствующих потребностей и обстоятельств FDA обновляет, изменяет или отзывает политики по мере необходимости.В последние месяцы поставки дезинфицирующих средств для рук на спиртовой основе от традиционных поставщиков увеличились, и теперь у большинства потребителей и медицинского персонала больше нет проблем с получением этих продуктов. Поэтому мы решили, что временное руководство целесообразно отозвать, и даем производителям время для корректировки своих бизнес-планов, связанных с производством этих продуктов, в соответствии с этими временными политиками.

Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов благодарит всех производителей, больших и малых, которые вмешались, чтобы предоставить американским потребителям и медицинским работникам дезинфицирующие средства для рук, когда они пользовались большим спросом во время пандемии.Мы готовы помочь тем, кто больше не планирует производить дезинфицирующие средства для рук, а также помочь тем, кто хочет продолжать это делать, обеспечить соблюдение соответствующих требований».

Дополнительная информация

  • Сегодня Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США объявило о намерении отозвать с 31 декабря 2021 г. руководство, первоначально выпущенное в марте 2020 г., в котором излагаются временные правила для производителей, которые в то время не были производителями лекарств, в отношении производства определенных спиртосодержащих средств для рук. дезинфицирующее средство и спирт для использования в дезинфицирующих средствах для рук во время чрезвычайной ситуации в области общественного здравоохранения.
  • С 31 декабря 2021 г. компании, производящие дезинфицирующие средства для рук на спиртовой основе в соответствии с временной политикой, должны прекратить производство этих продуктов. После этой даты производители, желающие продолжить выпуск дезинфицирующего средства для рук, могут делать это при условии, что они соблюдают предварительную окончательную монографию для безрецептурных местных антисептиков и другие применимые требования, включая требования FDA по текущей надлежащей производственной практике.
  • Производители, которые больше не планируют производить эти продукты, могут отменить регистрацию, следуя инструкциям на странице Инструкции по электронной регистрации и листингу лекарств.
  • Дезинфицирующие средства для рук, изготовленные до или 31 декабря 2021 г. и произведенные в соответствии с временными инструкциями, больше не могут продаваться или распространяться производителями после 31 марта 2022 г.

Дополнительная информация

###

Шаблон

Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США, агентство Министерства здравоохранения и социальных служб США, защищает здоровье населения, гарантируя безопасность, эффективность и защищенность лекарств для людей и животных, вакцин и других биологических продуктов для человека, а также медицинских устройств.Агентство также отвечает за безопасность продуктов питания, косметики, пищевых добавок, продуктов, испускающих электронное излучение, и за регулирование табачных изделий.



  • Текущее содержание:

Процесс брожения при производстве спирта

ФОН

Спирты жизненно необходимы в промышленности и торговле.Коммерческий спирт включает метанол, этанол, изопропанол и этиленгликоль. Этанол используется как растворитель, как добавка к топливу, в лекарствах, лосьонах. Этанол обычно называют обычным алкоголем. 1   Этанол получают путем ферментации сахаров. Ферментация – это химическое расщепление вещества бактериями, дрожжами или другими микроорганизмами. Ферментация углеводов в спирт — один из старейших процессов брожения. Ферментация начинается со смешивания источника сахара, дрожжей, воды, а затем позволяет дрожжам действовать в бескислородной среде.Эта анаэробная среда заставляет дрожжи прекращать сжигание сахара и позволяет им сбраживать спирт.

Таким образом, основной целью теста является производство этанола в процессе ферментации.

ТРЕБОВАНИЯ

Химические вещества: Кукурузная глюкоза

        Глюкоза

Оборудование:     Ферментер

        Центрифуга

        Фляга

ПРОЦЕДУРА

В промышленных масштабах ферментация является начальным этапом производства вина, пива, сидра.

Этанольная ферментация

Ферментация этанола — это биологический процесс, в ходе которого сахара, такие как глюкоза/сахароза, превращаются в клеточную энергию с образованием этанола и CO 2 в качестве побочных продуктов. 2  Брожение — это процесс, при котором дрожжи разлагаются на спирт и углекислый газ. Дрожжи осуществляют конверсию в отсутствие кислорода, из-за чего спиртовое брожение считается анаэробным процессом. 3   Для процесса ферментации используются дрожжи, такие как Saccharomyces cerevisae. 4   Сырьем, которое можно использовать в качестве субстрата, является глюкоза/сахароза. 5  Сырье сначала требует легкой/отсутствия предварительной обработки перед ферментацией. 6

Подготовка среды

После отбора нужных дрожжей ( Saccharomyces cerevisae ) и выделения их в чистом виде в асептических условиях готовят инокулят. Сначала дрожжи культивируют в колбах, чтобы увеличить размер инокулята, поскольку он будет пригоден для инокуляции.

Ферментация

Для ферментации используется непрерывная ферментация. При непрерывном брожении рост микробов поддерживается в ферментере в течение длительного периода времени; в то же время средства массовой информации добавляются через равные промежутки времени. 7 Температура и pH поддерживаются на уровне 21-26 o C и 4,0-4,5 соответственно. Продукт из ферментера собирается снова и снова, чтобы избежать переполнения, но ферментация никогда не останавливается и, таким образом, продолжается в течение длительного периода времени с добавлением питательных веществ и сбором метаболитов через регулярные промежутки времени.Этанол испаряется при температуре выше 27 o С. Во-первых, для хорошего роста организмов необходима аэрация; позже создаются анаэробные условия за счет удаления кислорода в сочетании с образованием углекислого газа. Затем, когда ферментация завершена, ферментационный бульон содержит этанол в диапазоне 6-9% по объему, что представляет примерно 90-95% превращение субстрата в этанол.

Глюкоза + Дрожжи = Этанол + Углекислый газ

Извлечение этанола

Массу отделяют центрифугированием на центрифуге.Этанол из ферментационного бульона может быть извлечен перегонкой. Для концентрации выше 95% применяется метод дистилляции. Для получения 100% спирта используется особый тип перегонки, известный как азеотропная перегонка. 8 Для этого сначала готовят азеотропную смесь бензола, воды, спирта, после чего смесь перегоняют при постепенном повышении температуры. По этой методике сначала выделяется бензол-этанол-вода, после чего остается только 100% спирт.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

100% спирт остается после выпуска бензол-этанол-вода.


Гликолиз и спиртовое брожение. (Источник:
http://www.icr.org/article/172/)


Этанольная ферментация. (Источник: http://slideplayer.com/slide/8809068/)

ССЫЛКИ
  1. Г. Ван ден Тилларт, Верхаген Мария, Ваарде В.А. «Образование этанола и регулирование рН». 1993: 157-170.

  2. Радж С.Б., Рамасвами С. «Структура и катализ алкогольдегидрогеназы дрожжей».53:5791-803.

  3. Денгис, Паскаль Б., Нелиссен Л.Р. Пол Г. «Механизмы флокуляции дрожжей: сравнение старинов верхового и низового брожения». Прикладная и экологическая микробиология: 1995: 718-728.

  4. Омура Ф. Нацеливание митохондриальных Saccharomyces cerevisiae на цитозоль и его влияние на образование вицинального дикетона в пивоварении. Прикладная микробиология и биотехнология. 2008: 503-513.

  5. Флит Г. Микробиология алкогольных напитков.Микробиология ферментированных пищевых продуктов: 1997: 217-262.

  6. Барнетт Дж. «История исследований дрожжей; Луи Пастер и его современники: 2000. 1850-1880 гг.

  7. Невойгт, Эльке, Пильгер, Шимдт». Генная инженерия пивоваренных дрожжей для снижения содержания этанола в пиве». 2002: 225-232.

  8. Кистер, Генри З. «Дизайн дистилляции». 1992: 1 st издание

• Россия: производство спирта по видам 2020

• Россия: производство спирта по видам 2020 | Статистика

Пожалуйста, создайте учетную запись сотрудника, чтобы иметь возможность отмечать статистику как избранную.Затем вы можете получить доступ к своей любимой статистике через звездочку в шапке.

Зарегистрируйтесь сейчас

В настоящее время вы используете общую учетную запись. Чтобы использовать отдельные функции (например, пометить статистику как избранное, установить статистические оповещения) пожалуйста, войдите в свой личный кабинет. Если вы являетесь администратором, пожалуйста, авторизуйтесь, войдя в систему еще раз.

Авторизоваться

Базовая учетная запись

Знакомство с платформой

У вас есть доступ только к базовой статистике.

Однозначный аккаунт

Идеальный учетную запись входа для отдельных пользователей

    • Мгновенный доступ до 1 м.
    • Скачать Download в XLS, PDF & PNG Формат
    • подробные Список литературы

    $ 59 $ 39 / месяц *

    в первые 12 месяцев

    Корпоративный счет

    Полный доступ

    Корпоративное решение со всеми функциями.

    * Цены не включают налог с продаж.

    Самая важная статистика

    самая важная статистика

    самая важная статистика

    самая важная статистика

    Самая важная статистика

    Дальнейшая дополнительная статистика

    Узнать больше о как Statista может поддержать ваш бизнес.

    Федеральная служба государственной статистики России. (17 декабря 2021 г.). Объем производства спирта в России с 2017 по 2020 год по видам (в млн декалитров) [График]. В Статистике. Получено 17 марта 2022 г. с https://www.statista.com/statistics/1014203/alcohol-production-volume-by-type-russia/

    Федеральная служба государственной статистики России. «Объем производства спирта в России с 2017 по 2020 год по видам (в млн декалитров)». Диаграмма. 17 декабря 2021 г. Статистика. По состоянию на 17 марта 2022 г.https://www.statista.com/statistics/1014203/alcohol-production-volume-by-type-russia/

    Федеральная служба государственной статистики России. (2021). Объем производства спирта в России с 2017 по 2020 год по видам (в млн декалитров). Статистика. Statista Inc.. Дата обращения: 17 марта 2022 г. https://www.statista.com/statistics/1014203/alcohol-production-volume-by-type-russia/

    Федеральная служба государственной статистики России. «Объем производства спирта в России с 2017 по 2020 год по видам (в млн декалитров).Statista, Statista Inc., 17 декабря 2021 г., https://www.statista.com/statistics/1014203/alcohol-production-volume-by-type-russia/

    Федеральная служба государственной статистики России, Объем производства спирта в Россия с 2017 по 2020 год, по видам (в млн декалитров) Statista, https://www.statista.com/statistics/1014203/alcohol-production-volume-by-type-russia/ (последнее посещение 17 марта 2022 г.)

    Чикагский адвокат по лицензированию производителей алкоголя

    Чикагские прокуроры штата и федеральные лицензии на производство спиртных напитков

    Производство алкогольных напитков может быть увлекательной и прибыльной формой бизнеса.Однако для производства пива, вина или спиртных напитков компания должна соответствовать ряду лицензионных требований. При подаче заявки на лицензию и / или разрешение важно работать с адвокатом, который имеет опыт работы как в государственных, так и в федеральных законах о лицензировании спиртных напитков.

    На протяжении более 30 лет юристы Bahr Anderson Law Group, LLC работают с предприятиями всех размеров для решения вопросов лицензирования спиртных напитков. Мы можем помочь подать заявку и получить необходимые государственные лицензии и федеральные разрешения, гарантируя, что ваш бизнес соответствует всем применимым законам и правилам.

    Федеральные разрешения производителей спиртных напитков

    Как правило, первым шагом, который необходимо выполнить в процессе лицензирования, является получение федерального разрешения от Бюро по налогам и торговле алкоголем и табаком (TTB). Виноделы и спиртзаводы должны будут получить федеральное базовое разрешение, а пивоварни — федеральное уведомление пивовара. Производители также должны обеспечить правильную маркировку продуктов, и для каждого производимого продукта должен быть получен Сертификат об одобрении этикетки (COLA).

    Лицензии производителей спиртных напитков штата Иллинойс

    После получения федерального разрешения производитель должен подать заявку на получение лицензии штата через Комиссию по контролю за производством спиртных напитков штата Иллинойс (ILCC). В штате Иллинойс имеется несколько классов лицензий производителей спиртных напитков в зависимости от типа и количества напитка, а также метода производства:

    • Класс 1: дистиллятор — эти владельцы лицензий могут перегонять, ферментировать, варить, смешивать, перерабатывать, смешивать или спиртные напитки или напитки в бутылках, и эти продукты могут быть проданы другим производителям дистилляторов, ректификаторам или дистрибьюторам.
    • Класс 2: Ректификатор. Эти лицензии применяются к тем, кто производит, перерабатывает, смешивает, смешивает или разливает алкогольные напитки, произведенные другой стороной.
    • Класс 3: Пивовар. Производители пива должны получить лицензию этого типа, и их продукция может продаваться дистрибьюторам.
    • Класс 4: Производитель вина первого класса. Этот тип лицензии позволяет производителю вина продавать и поставлять до 50 000 галлонов вина в год другим производителям или дистрибьюторам.
    • Класс 5: Производитель вина второго класса. Этот тип лицензии позволяет производителю вина продавать и поставлять более 50 000 галлонов вина в год другим производителям или дистрибьюторам.
    • Класс 6: винодел первого класса. Этот тип лицензии позволяет производителю производить и хранить до 50 000 галлонов вина в год и продавать его дистрибьюторам, розничным торговцам или людям за пределами штата Иллинойс.
    • Класс 7: винодел второго класса. Этот тип лицензии позволяет производителю производить и хранить от 50 000 до 150 000 галлонов вина в год и продавать его дистрибьюторам или людям за пределами штата Иллинойс.
    • Класс 8: Производитель вина с ограниченной ответственностью. Эти лицензии применяются только к производителям вина, которые используют продукты, выращенные в штате Иллинойс, и они могут продавать или поставлять до 40 000 галлонов вина в год дистрибьюторам или лицам, не имеющим лицензии.
    • Класс 9: Craft Distiller класса 1. Этот тип лицензии позволяет производителю спиртных напитков производить и хранить до 50 000 галлонов в год. Спиртные напитки могут продаваться дистрибьюторам, а владелец лицензии может подать заявление на освобождение от самораспространения, которое позволяет продавать до 5000 галлонов розничным торговцам каждый год.
    • Класс 10: Крафтовый дистиллятор класса 2. Позволяет производить до 100 000 галлонов спиртных напитков в год. Спиртные напитки могут быть проданы дистрибьюторам, и до 5000 галлонов в год могут быть переданы в бар, принадлежащий владельцу лицензии.

    В дополнение к лицензии производителя пивоварам или производителям спиртных напитков может потребоваться получить одну или несколько из следующих лицензий:

    • Лицензия на паб-пивоварню. год в одном месте.Пиво может быть продано дистрибьюторам или потребителям.
    • Лицензия на дистилляционный паб. Это позволяет производителю спиртных напитков производить до 5000 галлонов спиртных напитков в год, которые могут продаваться потребителям в одном и том же месте для потребления на территории предприятия или за его пределами.
    • Лицензия пивовара класса 1. Лицензированный пивовар может производить до 930 000 галлонов или 30 000 баррелей пива в год, которое может продаваться или доставляться дистрибьюторам. Пивовар также может получить освобождение от самораспределения, позволяющее продавать до 232 500 галлонов или 7 500 баррелей пива розничным торговцам.Владельцы этих лицензий не могут иметь лицензию на паб-пивоварню.
    • Лицензия пивовара класса 2. Лицензированный пивовар может производить до 3 720 000 галлонов или 120 000 баррелей пива в год, которое может продаваться или доставляться дистрибьюторам. Владельцы этих лицензий могут иметь до трех лицензий на паб-пивоварню, но они не имеют права на освобождение от самораспространения.
    • Разрешение на хранение пивоваренного склада. Оно позволяет обладателю лицензии пивовара класса 1 хранить до 930 000 галлонов пива, а обладателю лицензии пивовара класса 2 — до 3 720 000 галлонов.Пиво должно производиться в том же помещении, где оно хранится, и его нельзя продавать лицам, не имеющим лицензии, в этом месте.

    Производитель, который не находится в штате Иллинойс, может подать заявку на получение лицензии дилера-нерезидента. Это позволит им доставлять спиртные напитки в штат Иллинойс, хранить их на складе и продавать лицензированным дистрибьюторам-импортерам или иностранным импортерам. Каждая марка спиртных напитков, продаваемых лицензиату, должна быть зарегистрирована в ILCC.

    Обратитесь к адвокату по лицензированию алкогольных напитков штата Иллинойс

    Законы штата Иллинойс о лицензировании алкогольных напитков могут быть очень сложными, и производители хотят быть уверенными в том, что соблюдают свои юридические требования и избегают любых штрафов, которые могут угрожать их бизнесу.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.